Чувствительность пародонтопатогенов к клеточному соку пихты сибирской (микробиологическое исследование)

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Актуальность. При поиске новых эффективных средств профилактики воспалительных осложнений в состоянии периимплантатных тканей вызывают интерес продукты из хвойной зелени производства компании «Солагифт» (ООО «Солагифт», Томск). Среди них выделяется «Биоэффективный клеточный сок пихты сибирской» — 100% углекислотный экстракт пихты сибирской (водная фракция). Клеточный сок пихты рекомендован для усиления иммунитета, профилактики воспалительных заболеваний верхних дыхательных путей и лечения ряда патологических состояний. Сок пихты содержит витамин С, каротин, полифенольные соединения, флавоноиды, железо, магний, медь, марганец, цинк, хелатный комплекс мальтол-железо (природный антиоксидант).

Цель работы — микробиологическое исследование чувствительности пародонтопатогенов к «Биоэффективному клеточному соку пихты сибирской» разной концентрации.

Материал и методы. Проведено культивирование ряда пародонтопатогенов в присутствии «Биоэффективного клеточного сока пихты сибирской» в следующих пропорциях 1:5, 1:10, 1:15. Инкубирование длительностью до 3 сут проводили в биореакторе «Реверс-Спиннер RTS-1» (BioSan, Латвия) с автоматическим анализом оптической плотности культуры (OD) при длине волны λ=850 нм. Оптическую плотность измеряли в единицах МакФарланда (mcf). Оценка контроля роста культуры базировалась на анализе фаз роста пародонтопатогенов: адаптивная (лаг-фаза), экспоненциальная (лог-фаза), стационарная, отмирания. Использованы следующие клинические изоляты микроорганизмов: Streptococcus constellatus; Staphylococcus aureus; Fusobacterium nucleatum; Aggregatibacter actinomycetemcomitans.

Результаты. Микробиологическое исследование чувствительности пародонтопатогенов (на примере S. constellatus; S. aureus; F. nucleatum; A. actinomycetemcomitans) к «Биоэффективному клеточному соку пихты сибирской» показало замедление роста микроорганизмов в присутствии сока пихты и подавление роста культуры пародонтопатогенов при совместном культивировании с соком пихты. Достоверное снижение оптической плотности культур изученных пародонтопатогенов наблюдали при концентрации сока пихты 1:10 и особенно 1:5. В этих концентрациях рост культуры S. aureus отсутствовал, а степень снижения среднего показателя оптической плотности других пародонтопатогенов достигала 27,1% (A. actinomycetemcomitans), 31,8% (F. nucleatum), 33,6% (S. constellatus).

Полный текст

АКТУАЛЬНОСТЬ

Периимплантит является основной причиной дезинтеграции внутрикостных дентальных имплантатов [1, 2]. По общему мнению, воспалительные осложнения состояния периимплантатных тканей развиваются вследствие воздействия пародонтопатогенов [3–8]. Ввиду низкой комплаентности пациентов к соблюдению стандартов индивидуальной гигиены в имплантологии рекомендуется систематическое проведение профессиональной гигиены рта. Однако при этом сохраняется большая роль индивидуальной гигиены рта и, в частности, роль стоматологических ополаскивателей. Не прекращается поиск новых эффективных средств профилактики воспалительных осложнений в состоянии периимплантатных тканей, например, вызывают интерес продукты из хвойной зелени производства компании «Солагифт» (ООО «Солагифт», Томск). Среди них выделяется «Биоэффективный клеточный сок пихты сибирской» — 100% углекислотный экстракт пихты сибирской (водная фракция) [9].

Клеточный сок пихты рекомендован для усиления иммунитета, профилактики воспалительных заболеваний верхних дыхательных путей и лечения ряда патологических состояний. Сок пихты содержит витамин С, каротин, полифенольные соединения, флавоноиды, железо, магний, медь, марганец, цинк, хелатный комплекс мальтол-железо (природный антиоксидант).

Цель исследования — микробиологическое исследование чувствительности пародонтопатогенов к «Биоэффективному клеточному соку пихты сибирской» разной концентрации.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

Совместно с кафедрой микробиологии, вирусологии, иммунологии МГМСУ им. А.И. Евдокимова Минздрава России проведено культивирование ряда пародонтопатогенов в присутствии «Биоэффективного клеточного сока пихты сибирской» в следующих пропорциях 1:5, 1:10, 1:15 [10, 11].

Инкубирование длительностью до 3 сут проводилось в биореакторе «Реверс-Спиннер RTS-1» (BioSan, Латвия) с автоматическим анализом оптической плотности культуры (OD) при длине волны λ=850 нм. Оптическую плотность измеряли в единицах МакФарланда (mcf). Оценка контроля роста культуры базировалась на анализе фаз роста пародонтопатогенов: адаптивная (лаг-фаза), экспоненциальная (лог-фаза), стационарная, отмирания. В графиках динамики оптической плотности показатели С- и С+ обозначали линии «контроль среды» и «контроль культуры» соответственно. Настройки культивирования биореактора: 37 °C; RPM: 1600 min¹; Measurement freq.: 2 h¹; Rev. Spin period: 1 sec; Volume: 15–19mlλ: 850 nm.

Для данного микробиологического исследования использовали следующие клинические изоляты микроорганизмов: Streptococcus constellatus; Staphylococcus aureus; Fusobacterium nucleatum; Aggregatibacter actinomycetemcomitans.

РЕЗУЛЬТАТЫ

По результатам культивирования клинического изолята A. Actinomycetemcomitans с «Биоэффективным клеточным соком пихты сибирской» в контрольной пробирке лаг-фаза длилась до 27 ч (рис. 1). Ускорение бактериального прироста продолжалось в течение 8 ч, что ознаменовало начало логарифмической фазы роста (ускоренный рост на промежутке 27–36 ч). Экспоненциальная фаза роста характеризовалась максимальной скоростью деления бактерий в контрольном образце и отмечалась на промежутке с 36 (0,54 Mcf) до 48 ч (6,00 Mcf). Изменение оптической плотности на данном временном промежутке составило более 5,00 Mcf. Фаза торможения, или замедленного роста, в период линейного роста характеризовалась постоянной скоростью прироста биомассы (числа клеток), была достаточно продолжительной — с 48–78 ч культивирования с выходом в стационарную фазу культивирования с показателем 7,23 Mcf (78 ч). Соотношение отмирающих, вновь образующихся и покоящихся клеток становится стабильным. Прироста биомассы не наблюдается. Средний показатель стационарной фазы — 7,20±0,05 Mcf.

 

Рис 1. Оптическая плотность культур пародонтопатогенов в динамике культивирования с «Биоэффективным клеточным соком пихты сибирской» разной концентрации / Fig. 1. Optical density of periodontal pathogen cultures in the dynamics of cultivation with “Bioeffective cell juice of Siberian fir” of different concentrations

 

В разведении сока пихты 1:15 прослеживалась пролонгация фазы ускоренного роста с максимальным показателем 0,65 Mcf (42 ч). Экспоненциальная фаза имела интенсивную генерацию бактериальных популяций, скорость которой соответствовала контрольному образцу, однако максимальный показатель в данной фазе составил 5,1 Mcf, что существенно ниже, чем в контроле. Фаза замедления бактериального прироста и стационарная фаза по своей тенденции совпадала с контрольным образцом. Средний показатель в стационарной фазе — 6,21±0,05 Mcf.

В разведении 1:10 не было отличия в лаг-фазе (в сравнении с предыдущими образцами), скорость бактериального прироста в логарифмической фазе была ниже, со средним изменением оптической плотности в 0,56±0,05 Mcf. Окончание фазы логарифмического роста 68 ч (4,87 Mcf). Средний показатель в стационарной фазе составил 5,31±0,05 Mcf.

Значительное удлинение фазы адаптации отмечали в образце с разведением сока пихты 1:5. Ускорение бактериального прироста началось только с 48-го часа культивирования, что почти на 18 ч позже, чем в контрольном образце. Фаза ускоренного роста была длиннее, чем в других образцах, и выход культуры в экспоненциальный рост был отмечен только к 73-му часу культивирования. Продолжительность лог-фазы — 25 ч, максимальный показатель — 5,12 Mcf. Средний показатель в стационарной фазе — 5,25±0,05 Mcf, что на 27% меньше, чем в контрольном образце.

По результатам культивирования клинического изолята F. nucleatum с «Биоэффективным клеточным соком пихты сибирской» в контрольной пробирке фаза адаптации продолжалась около 36 ч, первые признаки начала бактериального прироста отмечались после 37-го часа культивирования с менее выраженной фазой ускоренного роста (39–45 ч). Средний показатель изменения оптической плотности составил 0,22 Mcf (снятие показаний OD каждые 3 ч). Экспоненциальную фазу роста, характеризуемую максимальной скоростью деления бактерий, в контрольном образце регистрировали с 45-го (0,45 Mcf) до 73-го часа (4,98 Mcf). В данной фазе отмечается высокая скорость бактериального прироста и изменение оптической плотности в среднем на 5,5±0,05 Mcf. Фаза замедленного роста объединяет две фазы — фазу линейного роста (μ=const) и фазу отрицательного ускорения (98–103 ч). Средний показатель стационарной фазы составил 5,4±0,05 Mcf.

В разведении клеточного сока в соотношении 1:15 статистически достоверных результатов не наблюдали (5,0±0,05 Mcf). Скорость прироста бактериальных популяций и основные временны́е границы фаз роста совпадали с контрольным образцом.

В разведении концентрата в соотношении 1:10 и 1:5 отмечали небольшое увеличение адаптивной фазы с моментальным переходом культуры в фазу логарифмического роста. В данных образцах скорость генерации существенно снижена в сравнении с «классической» лог-фазой, поэтому в данном случае происходит пропорциональное увеличение численности бактериальных клеток — «сбалансированный рост». Средний показатель стационарной фазы в концентрациях 1:10 и 1:5 — 3,60±0,05 и 3,44±0,05 Mcf, что меньше, чем в контрольном образце.

В контрольной пробе наблюдали типичный рост бактериальной популяции S. aureus. Начальная, или фаза адаптации, составляла 3 ч, после чего ускоренный рост переходил в экспоненциальную фазу, и кривая стремительно достигала максимума на 10-й час (2,53 Mcf). Стационарная фаза была непродолжительной и длилась 5 ч, после чего культура перешла в фазу отмирания. «Урожай» стационарной фазы отмечен средним показателем 2,43±0,05 Mcf.

При добавлении клеточного сока пихты с разведением 1:15 отмечалась существенная пролонгация адаптивной фазы — до 24 ч (контрольный образец – до 3 ч). Экспоненциальная фаза по степени бактериального прироста не отличалась от контрольной, но фаза замедления была более выраженной, чем в предыдущем образце. Максимальный показатель оптической плотности при выходе в стационарную фазу культивирования 2,10 Mcf. В данной концентрации прослеживается явное бактериостатическое воздействие исследуемого образца, а в меньшем разведении (1:5 и 1:10) роста не наблюдалось.

Оценка чувствительности к различным концентрациям сока пихты микроаэрофильного S. constellatus показала, что фаза адаптации, охватывающая промежуток от момента посева бактерий до видимого начала их роста в контрольной пробирке, продолжалась в среднем до 4-го часа культивирования, у сравниваемых образцов было отмечено удлинение данной фазы в среднем на 2–4 ч. Экспоненциальная фаза, характеризующаяся прогрессирующим нарастанием скорости деления клеток, имела достоверные отличия только при разведении исследуемого образца в соотношении 1:5. В данном образце отмечался спад скорости генерации популяций и ярко выраженная фаза замедления. Стационарная фаза для образцов в разведении 1:10 и 1:15 наступила на промежутке 14–15 ч, в отличие от образца с минимальным разведением 18 ч. Средний показатель на пике стационарной фазы для образцов с разведением 1:10 и 1:15 составил соответственно 1,20 Mcf и 1,50 Mcf, для образца 1:5 — 1,03 Mcf (контрольный образец 1,55 Mcf).

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Проведенное микробиологическое исследование чувствительности пародонтопатогенов (на примере S. constellatus; S. aureus; F. nucleatum; A. actinomycetemcomitans) к «Биоэффективному клеточному соку пихты сибирской» показало замедление роста микроорганизмов в присутствии сока пихты и подавление роста культуры пародонтопатогенов при совместном культивировании с соком пихты. Достоверное снижение оптической плотности культур всех изученных пародонтопатогенов наблюдалось при концентрации сока пихты 1:10 и особенно 1:5. В этих концентрациях рост культуры S. aureus отсутствовал, а степень снижения среднего показателя оптической плотности других пародонтопатогенов достигала 27,1% (A. actinomycetemcomitans), 31,8% (F. nucleatum), 33,6% (S. constellatus).

ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ИНФОРМАЦИЯ / ADDITIONAL INFO

Источник финансирования. Авторы заявляют об отсутствии внешнего финансирования при проведении исследования.

Funding source. This study was not supported by any external sources of funding.

Конфликт интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.

Competing interests. The authors declare that they have no competing interests.

Вклад авторов. Все авторы внесли существенный вклад в разработку концепции, проведение исследования и подготовку статьи, прочли и одобрили финальную версию перед публикацией.

Author contribution. All authors made a substantial contribution to the conception of the work, acquisition, analysis, interpretation of data for the work, drafting and revising the work, final approval of the version to be published and agree to be accountable for all aspects of the work.

×

Об авторах

Алексей Сергеевич Романов

Медико-биологический университет им. А.И. Бурназяна

Автор, ответственный за переписку.
Email: docromanoff@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-4414-0270

аспирант

Россия, 123098, Москва, ул. Гамалеи, д. 15

Арсений Витальевич Рагулин

Академия постдипломного образования

Email: senya12_95@mail.ru
Россия, Москва

Егор Евгеньевич Олесов

Академия постдипломного образования

Email: olesov_georgiy@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-9165-2554
SPIN-код: 8924-3520

д-р мед. наук, доцент

Россия, Москва

Виктор Николаевич Царев

Медико-биологический университет им. А.И. Бурназяна

Email: nikola777@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0002-3311-0367
SPIN-код: 8180-4941

д-р мед.н., профессор

Россия, Москва

Валентина Николаевна Олесова

Медико-биологический университет им. А.И. Бурназяна

Email: olesova@implantat.ru
ORCID iD: 0000-0002-3461-9317
SPIN-код: 6851-5618

д-р мед.н., профессор

Россия, Москва

Список литературы

  1. Олесова В.Н., Бронштейн Д.А., Степанов А.Ф., и др. Частота развития воспалительных осложнений в периимплантатных тканях по данным отдаленного клинического анализа // Стоматолог. 2017. № 1. С. 58–62.
  2. Кулаков А.А. Дентальная имплантация: национальное руководство. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2018.
  3. Никитин В.В., Олесова В.Н., Пашкова Г.С., и др. Профилактика периимплантита с использованием средства на основе бактериофагов // Российский вестник дентальной имплантологии. 2017. № 2. С. 55–59.
  4. Пародонтология. Национальное руководство. 2-е издание / под ред. Ревазовой З.Э. Москва, 2018.
  5. Царев В.Н., Панин А.М., Чувилкин В.И., и др. Комплексная оценка содержания пародонтопатогенных бактерий и цитокинов при периимплантите с помощью ПЦР и иммуноферментного анализа // Российский вестник дентальной имплантологии. 2017. № 3–4. С. 86–90.
  6. Гветадзе Р.Ш., Дмитриева Н.А., Воронин А.Н. Сравнительный анализ степени колонизации микроорганизмов на поверхности индивидуальных формирователей десны // Институт стоматологии. 2019. № 3. С. 30–31.
  7. Ушаков Р.В., Царев В.Н. Антимикробная терапия в стоматологии. Принципы и алгоритмы Москва: РМАНПО, 2019.
  8. Царев В.Н., Николаева Е.Н., Ипполитов Е.В. Пародонтопатогенные бактерии – основной фактор возникновения и развития пародонтита // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2017. № 5. С. 101–112.
  9. Солагифт [Internet]. Компания Солагифт [дата обращения: 06.01.2022]. Доступ по ссылке: www.solagift.ru
  10. Царев В.Н., Атрушкевич В.Г., Ипполитов Е.В., Подпо- рин М.С. Сравнительный анализ антимикробной активности пародонтальных антисептиков с использованием автоматизированной системы контроля роста микроорганизмов в режиме реального времени // Пародонтология. 2017. № 1. С. 4–10.
  11. Морозов Д.И., Волков А.Г., Дикопова Н.Ж., Олесов Е.Е., Пономарева А.Г. Определение минимальной подавляющей концентрации к метронидазолу представителей облигатно и факультативно-анаэробной микрофлоры пародонтальных карманов // Российский стоматологический журнал. 2021. Т. 1, № 25. С. 53–57.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис 1. Оптическая плотность культур пародонтопатогенов в динамике культивирования с «Биоэффективным клеточным соком пихты сибирской» разной концентрации

Скачать (383KB)

© Романов А.С., Рагулин А.В., Олесов Е.Е., Царев В.Н., Олесова В.Н., 2022

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 86295 от 11.12.2023 г
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ЭЛ № ФС 77 - 80635 от 15.03.2021 г
.



Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах