ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ ПРИМЕНЕНИЯ БИОРЕЗОРБИРУЕМЫХ КОЛЛАГЕНОВЫХ МЕМБРАН ПРИ ЗАКРЫТИИ ПОСЛЕОПЕРАЦИОННЫХ ДЕФЕКТОВ СЛИЗИСТОЙ ОБОЛОЧКИ РТА КРОЛИКОВ



Цитировать

Полный текст

Аннотация

Цель - повышение эффективности хирургического лечения стоматологических пациентов с применением биорезорбируемых коллагеновых мембран для закрытия послеоперационных раневых дефектов слизистой оболочки рта. Материал и методы. Экспериментальная модель была создана на 18 лабораторных животных-кроликах. Животных разделили на 3 группы: у животных группы сравнения заживление дефекта слизистой оболочки на нёбе проходило путем вторичного натяжения тканей, в группах исследования - под мембраной из ксеноперикарда (1) и коллагеновой пленкой (2). Материалом морфологического исследования служили биоптаты регенератов слизистой оболочки твердого нёба всех животных. Исследовали микротомные срезы, толщиной 4-5мкм с помощью светового микроскопа. Результаты. Результаты свидетельствуют о формировании грануляционной ткани и эпителизации дефектов как в группах исследования, так и в группе сравнения. При использовании коллагеновых материалов обнаружена заметная активация раневого процесса, укорочение сроков эпителизации и рубцевания. Отмечали определенное преимущество перикарда в активации репарации раны. Вывод. Применение коллагеновых мембран может быть рекомендовано как метод выбора при закрытии послеоперационных дефектов слизистой оболочки рта после клинических испытаний.

Полный текст

Актуальность В последние десятилетия в хирургической стоматологии заметно обостряется проблема закрытия раневого дефекта слизистой оболочки донорской зоны, чаще нанёбе. Это связано с повышением хирургической активности стоматологов при увеличении зоны прикрепленной кератинизированной десны при ее дефиците, устранении локализованных и множественных рецессий десны (распространенность рецессий десны составляет до 100% у лиц старше 64 лет), вестибулопластике (по данным ВОЗ, частота встречаемости мелкого преддверия рта составляет 62,6%), дентальной имплантации, при иссечении пораженных предраками участков слизистой оболочки рта [1-3]. Несмотря на эффективность методики в области реципиентной зоны, одним из ее недостатков является наличие открытой раны в донорской области, период заживления которой бывает довольно болезненным и дискомфортным для пациентов. Велика вероятность возникновения механической травмы открытой раневой поверхности твердой пищей и пищевым комком, в результате чего может возникать боль, кровотечение, нагноение и повреждение образующейся грануляционной ткани [1-4]. Лечение открытых ран в полости рта является весьма сложной задачей, при которой невозможно полностью изолировать раневую поверхность от неблагоприятного влияния механических, химических и физических факторов, а также от проникновения микроорганизмов. Из-за постоянного омывания раны ротовой жидкостью затруднено применение фармакологических препаратов, обеспечивающих анал-гезирующее, антибактериальное, противоспалитель-ное и репаративное действие. [1, 5, 6] В литературе отмечаются достаточно разнообразные данные о методах закрытия донорского участка. Некоторые авторы накладывали направляющие швы хромированным кетгутом или шелковой нитью, чтобы гарантировать гемостаз [4]. Позже начали использовать микроволокнистый гемостатический коллаген в виде измельченной массы или не-тканной мембраны. Другие авторы рекомендуют использование пародонтальной повязки, цианакрилатный медицинский клей, резирбируемую целлюлозную повязку [4, 7, 8]. Для обеспечения максимального послеоперационного комфорта в донорской зоне использовали ранее изготовленную защитную каппу. Однако закрытие раневой поверхности донорской области йодоформным тампоном, гемостатической губкой, наложением направляющих швов оказывается временной мерой, в то время как использование термопластичных капп требует дополнтель-ных материальных затрат пациента и ощутимо удорожает лечение. Следовательно, разработка и внедрение материалов и усовершенствование методов лечения, способствующих защите и регенерации слизистой оболочки рта в зоне раневых дефектов, является актуальной задачей для хирургического лечения пациентов со стоматологическими заболеваниями. [5, 7]. В литературе описан положительный опыт применения коллагеновых мембран, в том числе ацеллюлярного ксеноперикарда в качестве подложки при закрытии слизистых оболочек при пластике неовлагалища, орбиты и уретры. Материалы имеют ряд преимуществ, таких как эластичность, достаточную пористость, отличную биосовместимость с тканями реципиентной зоны, однако опыт использования в рамках стоматологической практики отсутствует [9]. В связи с этим, представляет интерес сравнительный анализ применения биорезорбируемых коллагеновых мембран в комбинации с левомецитином и метилурацилом для закрытия раневых дефектов слизистой оболочки рта в эксперименте на животных с последующим применением в клинике хирургической стоматологии. Материал и методы Экспериментальная модель опытного исследования создана при использовании 18 особей кроликов породы шиншилла мужского пола массой 4000 г на базе Центрального вивария ФГАОУ ВО Первого МГ-МУ им И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет). Всем животным сформировали дефекты слизистой оболочки на твердомнёбе с помощью скальпеля 15С. Экспериментальных животных разделили на 3 группы. У 6 животных группы сравнения рана заживала вторичным натяжением. У 6 животных 1-й группы заживление проходило под коллагеновой мембраной из ксеноперикарда; у 6 животных 2-й группы исследования рана заживала под коллагеновой пленкой. Мембраны зафиксированы в полости рта узловыми швами Prolene 6|0. Животных выводили из эксперимента на 3, 6, 10-е сутки. Материал фиксировали в 10% р-ре формалина, заливали в парафин, микротомные срезы толщиной 4-5 мкм окрашивали гематоксилином и эозином, микроско-пировали в универсальном микроскопе Leica DM4000 B LED, фотографировали видеокамерой Leica DFS 7000T, проводили фазово-контрастную и поляризационную микроскопию. Результаты При гистологическом экспериментальном исследования получены следующие результаты. У животных группы сравнения на 3-и сутки эпителизации раневой поверхности не наблюдали, отмечали воспалительную инфильтрацию, микрососудистую дезорганизацию, отсутствие грануляционной ткани. К 6-м суткам поверхность раны была не эпителизиро-вана, хотя вокруг дефекта отмечали пролиферацию эпителиальных клеток. Дефект был заполнен незрелой грануляционной тканью, отмечалось снижение признаков воспаления. Через 10 сут поверхность дефекта была покрыта эпителием, под которым наблюдали фиброзирующуюся грануляционную ткань. Гистологическая картина биоптатов животных групп исследования отличалась от таковой в группе сравнения. Через 3 сут у животных обеих групп эпи-телизация отсутствовала, но на краях дефекта отмечена гиперплазия эпителия. Воспалительная инфильтрация была менее выражена. В группе исследования с перикардом часть дефекта уже была заполнена незрелой грануляционной тканью. Через 6 сут отмечали полную эпителизацию раны; под эпителием была сформирована зрелая грануляционная ткань, переходящая в рубцовую. Воспалительная инфильтрация была значительно слабее, чем в группе сравнения. Наибольшую активацию репарации раны отмечали при использовании перикарда. К 10-м суткам раневой дефект был эпителизиро-ван, под эпителием располагалась фиброзно-рубцовая ткань с минимальной воспалительной инфильтрацией. В группе исследования с перикардом рубцовая ткань была более зрелая, чем в группе исследования с коллагеновой пленкой. Заключение Таким образом, результаты гистологического исследования биоптатов регенератов слизистой оболочки рта животных в рамках экспериментального исследования показали, что при закрытии раневого дефекта слизистой оболочки твердогонёба перикардом и коллагеновой пленкой была выявлена заметная стимуляция и сокращение сроков эпителизации и рубцевания раны, особенно при использовании перикарда. Анализ результатов гистологического исследования применения биорезорбируемых мембран из ксеноперикарда при закрытии раневых поверхностей слизистой оболочки твердогонёба лабораторных животных позволяет рекомендовать их использование для закрытия донорского участка при заборе свободного десневого трансплантата или послеоперационного раневого дефекта слизистой оболочки рта в клинике хирургической стоматологии после клинических испытаний.
×

Об авторах

С. В Тарасенко

ФГАОУ ВО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет)

119048, Москва, Россия

А. Б Шехтер

ФГАОУ ВО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет)

119048, Москва, Россия

Е. В Истранова

ФГАОУ ВО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет)

119048, Москва, Россия

Е. А Морозова

ФГАОУ ВО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет)

119048, Москва, Россия

Наталия Алексеевна Благушина

ФГАОУ ВО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет)

Email: blagushina.natalia@yandex.ru
ассистент кафедры хирургической стоматологии Института стоматологии ФГАОУ ВО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет) 119048, Москва, Россия

Список литературы

  1. Дурново Е.А., Мочалова Д.А., Беспалова Н.А., Янова Н.А., Клочков А.С., Рунова Н.Б. Клиническая оценка течения раневого процесса на слизистой оболочке полости рта при использовании полимерного трансплантата. Научное обозрение. Медицинские науки. 2015; 1: 165.
  2. Давидян А.Л. Применение свободного соединительнотканного трансплантата для устранения рецессий. Клиническая стоматология. 2007; 4: 11-5.
  3. Грудянов А.И., Николаев А.В., Сравнительный анализ отдаленных результатов использования различных ауто- и аллотрансплантатов для создания зоны кератинизированной десны при вестибулопластике на нижней челюсти. Стоматология. 2016; 95: 40-3.
  4. Дурново Е.А., Артифексова А.А, Воробьева А.В.,Беспалова Н.А, Рунова Н.Б., Ярцева А.В. Особенности регенерации слизистой оболочки рта при пластике свободным десневым трансплантатом. Медицинский альманах.Эпидемиология. 2011; 4: 173.
  5. Cho Kwang-Hee, Yu Sun-Kyoung, Lee Myoung-Hwa Histological assessment of the palatal mucosa and greater palatine artery with reference to subepithelial connective tissue grafting. Anatomy & Cell Biology. 2013; 46: 171-6.
  6. Azevedo F.P., Morandini A.C.F., Sipert C.R. Palatal mucosa derived fibroblasts present an adaptive behavior regarding cytokine secretion when grafted onto the gingival margin. BMC Oral Health. 2014; 14- 21.
  7. Agudio G, Nieri M, Rotundo R, Cortellini P, Pini Prato G. Free gingival grafts to increase keratinized tissue: A retrospective longterm evaluation (10 to 25 years) of outcomes. J. Periodontol. 2008; 79: 587-94.[PubMed]
  8. Llopis-Grimalt M.A., Munar-Bestard M., Ramis J.M., Monjo M. Tissue-Engineered Oral Mucosa Constructs for in Vitro Research and Clinical Applications. Biomed. J. STR. 2018; 17-20.
  9. Миланов Н.О., Адамян Р.Т., Липский К.Б., Гуляев И.В. Подготовка лучевого, кожно-фасциального аутотрансплантата для протяженной уретропластики. Анналы пластической, реконструктивной и эстетической хирургии. 2007; 4: 70-3.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© ООО "Эко-Вектор", 2019



СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 86295 от 11.12.2023 г
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ЭЛ № ФС 77 - 80635 от 15.03.2021 г
.



Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах