EFFICIENCY THE HYGIENIC PROPERTIES OF CLASP DENTURES FOR PATIENTS WITH MISSING TEETH AND PERIODONTITIS

Full Text

Микрофлора ротовой полости представлена аэробными, анаэробными и факультативно-анаэробными микроорганизмами, концентрация которых в 1 мл слюны составляет 107-108 колониеобразующих единиц (КОЕ) [1]. Способность к проникновению условно-патогенной микрофлоры из дефектов слизистой оболочки полости рта, с поверхности зубных протезов и тканей протезного ложа в кровяное русло является чрезвычайно опасной для организма [2]. Не соответствующие клиническим требованиям зубные протезы способствуют персистенции микроорганизмов, особенно актуальной данная проблема считается у пациентов с частичной потерей зубов и патологией пародонта. Под влиянием токсинов снижается устойчивость тканевых структур протезного ложа к механическим воздействиям. Это обусловливает формирование очагов хронической инфекции с последующей сенсибилизацией и высокой степенью риска развития общих аутоиммунных заболеваний. Недостаточность иммунологических реакций в сочетании с длительной колонизацией условно-патогенной микрофлоры, вызывающей повреждения тканей полости рта, приводят к развитию тяжелых патологических процессов в тканях пародонта, ведущих к преждевременному удалению зубов [3]. Повышение эффективности проводимого ортопедического лечения за счёт стабильности отдалённых клинических результатов возможно только при сохранении устойчивых качественных показателей дентальных реставраций в отдалённые сроки. Это невозможно без обоснованного выбора конструкционного материала, особенно при наличии заболеваний пародонта. Сравнительная характеристика данных о видовом составе и степени бактериальной обсеменённости условно-патогенной микрофлорой конструкционных материалов для бюгельных протезов позволит не только выявить материал, наименее подверженный колонизации, но и определить факторы, определяющие адгезию условно-патогенных микроорганизмов [4]. Цель исследования - изучение гигиенических свойств материалов для изготовления бюгельных протезов у пациентов с частичной потерей зубов и патологией пародонта при помощи оценки колонизации образцов стоматологических конструкционных сплавов условно-патогенной микрофлорой в эксперименте in vitro. Материал и методы В эксперименте использованы бактериальные культуры, охватывающие широкий спектр представителей условно-патогенной микрофлоры: Staphylococcus aureus wood 95, Escherichia coli B, Streptococcus pyogenes 5, Pseudomonas aeroginosa 573, Candida albicans. Обоснованием выбора в качестве тест-штаммов перечисленных бактерий явились результаты собственных исследований и литературные источники. Сущность метода заключалась в сравнительной оценке выживаемости микроорганизмов пяти клинически значимых видов (S. aureus, E. coli, St. pyogenes, P. aeroginosa и С. albicans) на поверхности образцов из кобальто-хромового сплава для изготовления съёмных протезов «Gialloy PA Co/Cr» (BK Giulini Chemie, Германия), золотого сплава («КАСДЕНТ-Б», ЗАО «Стильдент», Россия), из кобальто-хромового сплава с золотым покрытием «Кэмадент» российского предприятия АО «Суперметалл», нанесенного методом гальваностегии [5]. Отмоделированные на огнеупорной модели восковые репродукции размером 20 × 20 × 0,5 мм были отлиты из соответствующих материалов в зуботехнической лаборатории. Образцы были отполированы. Для каждого материала изготовили и исследовали по 10 образцов, всего 30 образцов. На каждую из сторон образца наносили по 0,2 мл смеси (суспензии) из микроорганизмов. Исходная концентрация микроорганизмов составляла 4 ∙ 105 - 5 ∙ 105 КОЕ/мл. Суспензию равномерно распределяли по поверхности образцов стерильным шпателем. Контаминированные тест-микроорганизмами образцы помещали от 1 до 10 сут в стерильные чашки Петри, а чашки Петри - в микроклиматическую камеру, где поддерживали оптимальные для роста микроорганизмов параметры среды (90-99 % влажности при t 37 0С). Оценку количественного содержания микроорганизмов на образцах материалов проводили на 2, 7 и 10-е сутки эксперимента. Для этого после истечения указанных сроков образцы дважды последовательно отбалтывали в 5 мл стерильного физиологического раствора. Первое отбалтывание было приравнено к гигиеническому уходу пациентами за зубными протезами. Высевы проводили после второго отбалтывания в 5 мл стерильного физиологического раствора на различные питательные среды по общепринятым методикам [6]. Посевы инкубировали при температуре 37 0С в течение 24 ч и при 25-30 0С в течение 48 ч - при выращивании грибов. После истечения необходимых в эксперименте сроков был произведён подсчет колоний на 1 см2 питательной среды. Результаты и обсуждение Результаты исследований колонизации материалов условно-патогенной микрофлорой представлены в таблице. Полученные результаты колонизации образцов условно-патогенной микрофлорой указывают, что только культура P. aeruginosa продемонстрировала наибольший рост на тестируемых материалах до конца эксперимента. Наиболее значительное количество бактерий P. aeruginosa зафиксировано на образце кобальто-хромового сплава на 10-е сутки исследования. Число жизнеспособных бактерий P. aeruginosa по сравнению с первоначальной колонизацией увеличилось более чем на 19,8 % и составило 4,1∙103 КОЕ/см2. На других образцах увеличение количества бактерий P. aeruginosa было менее выраженным. Так, у сплава на основе золота на 10-е сутки исследования число жизнеспособных бактерий P. aeruginosa по сравнению с первоначальной колонизацией увеличилось на 17,8 % и составило 3 ∙ 103 КОЕ/см2, у сплава с гальваностегией произошло увеличение КОЕ на 14,6 % и составило 2,1 ∙ 103 КОЕ/см2. S. aureus, Е. coli, St. pyogenes и С. albicans на всех изученных образцах также сохраняли жизнеспособность и способность к размножению до 10-х суток исследования, однако рост КОЕ был менее интенсивным, чем у P. aeruginosa. Максимальное количество КОЕ перечисленных выше микроорганизмов, возрастающее к концу исследовательского срока, зафиксировано на образце из кобальто-хромового сплава. У кобальто-хромового сплава на 10-е сутки исследования число жизнеспособных бактерий S. aureus по сравнению с колонизацией сплава на основе золота увеличилось на 53,1 % и составило 5,2 ∙ 103 КОЕ/см2 по сравнению с колонизацией сплава с гальваностегией увеличилось на 69 %. У кобальто-хромового сплава на 10-е сутки исследования число жизнеспособных бактерий Е. coli и St. pyogenes по сравнению с колонизацией сплава на основе золота увеличилось соответственно на 41,8 и 14,8 % и составило 1,01 ∙ 103 КОЕ/см2, и 3,4 ∙ 103 КОЕ/см2, по сравнению с колонизацией сплава с гальваностегией увеличилось на 45,6 %. У кобальто-хромового сплава на 10-е сутки исследования число жизнеспособных бактерий С. albicans по сравнению с колонизацией сплава на основе золота увеличилось на 62,5% и составило 1,3 ∙ 103 КОЕ/см2, по сравнению с колонизацией сплава с гальваностегией увеличилось на 76,7 %. Выводы 1. Представленный метод оценки колонизации условно-патогенной микрофлорой в эксперименте in vitro образцов сплавов для изготовления бюгельных протезов позволяет объективно оценить уровень бактериальной обсеменённости стоматологических материалов и спрогнозировать эффективность проведения гигиенических мероприятий съёмных протезов, что особенно важно у пациентов с воспалительными заболеваниями пародонта. 2. Все исследованные образцы подвержены колонизации условно-патогенными микроорганизмами. Степень колонизации зависит от химического состава, степени шероховатости поверхности материала и от вида бактериальных культур. 3. Структурная неоднородность, низкая чистота поверхности, полируемости кобальто-хромового сплава обеспечивают адгезию микробных клеток, увеличивая тем самым колонизацию микрофлоры на поверхности материала. Образец сплава на основе золота, а также кобальто-хромового сплава с гальваностегией показали идентичные результаты сниженной сорбции микроорганизмов, а также хорошие гигиенические качества.

About the authors

Malkan Abdrashitova Amhadova

M.F. Vladimirsky Moscow regional scientific-research clinical Institute

Email: amkhadova@mail.ru
Dr. Med. Sci., Professor, head Department 129110, Moscow

D. Yu Rahaeva

Stavropol state medical University

355017, Stavropol

S. N Garazha

Stavropol state medical University

355017, Stavropol

Z. S-S Hubaev

M.F. Vladimirsky Moscow regional scientific-research clinical Institute

129110, Moscow

E. N Grishilova

Stavropol state medical University

355017, Stavropol

E. V Arutyunov

Stavropol state medical University

355017, Stavropol

T. S.-S Hubaev

Stavropol state medical University

355017, Stavropol

S. S Hachaturov

Stavropol state medical University

355017, Stavropol

References

Supplementary files