Comparison of the efficacy of disinfectants for cleaning complete removable acrylic dentures

Full Text

ОБОСНОВАНИЕ

Проблема качественной очистки и дезинфекции съёмных протезов остаётся актуальной, поскольку, согласно данным Всемирной организации здравоохранения, наблюдается тенденция к увеличению количества лиц пожилого возраста [1, 2]. А значительная часть пациентов со съёмными протезными конструкциями — пожилые люди, которые испытывают трудности с дезинфекцией протезов [3]. Согласно исследованиям С.Н. Разумовой и соавт. [4], M.A.K. Tabet и соавт. [5], отмечено до 76% случаев неудовлетворительной гигиены полости рта и протезов. Поддержание удовлетворительной гигиены полости рта является основной мерой профилактики возникновения различных стоматологических заболеваний. Микрофлора собственно полости рта является сложной по составу, уникальной экологической системой, которая может изменяться под воздействием различных факторов (влажность, изменение pH и температуры, наличие протезов, гигиена и др.) [6]. Микробная бляшка представляет собой структурированные микробные сообщества в полисахаридном матриксе, которые находятся не только на различных органах и тканях полости рта человека, но и на реставрационных и конструктивных материалах, в том числе и на протезах [6, 7].

Акриловые протезы являются самым популярным видом съёмных протезов. Акриловая пластмасса представляет собой жёсткий и пористый материал. В свою очередь микропоры на поверхности базисов акриловых протезов служат ретенционными пунктами для микроорганизмов. Колонии микроорганизмов на поверхности протезов приводят к образованию микробных бляшек, что негативно сказывается на гигиене полости рта. Присутствие остаточного мономера, красителей и других элементов в составе акриловой пластмассы может привести к появлению аллергических реакций, а в комбинации с микробным фактором — и к токсико-аллергическим реакциям [8].

M. Murakami и соавт. провели исследование и выделили из налёта со съёмных протезов более 60 видов прокариот. В подавляющем большинстве обнаружены следующие виды бактерий: Candida spp. (Candida albicans, Candida glabrata, Candida tropicalis), Streptococcus mutans, Streptococcus salivarius, Streptococcus mitis, лактобактерии, дифтероиды, гемофилы, пневмококки и др. [9].

Исследования Е.А. Рубцовой и соавт. позволяют сделать вывод, что недостаточная гигиеническая обработка съёмных зубных протезов приводит к проникновению патогенных микроорганизмов внутрь полимерных базисов протезов на 2,0–2,5 мл [10]. Со временем на поверхности базисов протезов образуются микротрещины. Эти образования служат дополнительными местами прикрепления для патогенных микроорганизмов. Плохая гигиена протезов и полости рта приводит к образованию микробного налёта, что ухудшает гигиенический статус пациента и увеличивает риск возникновения заболеваний полости рта [11, 12].

Существует прямая корреляция между уровнем гигиены полости рта человека и его соматическим здоровьем. Наличие микробной биоплёнки на поверхности протезов может поддерживать различные системные заболевания: бактериальный эндокардит, аспирационная пневмония и хроническая обструктивная болезнь лёгких [13].

Методы и способы очистки и дезинфекции съёмных протезов, которые известны на сегодняшний день, не всегда дают приемлемый результат, так как не все дезинфицирующие средства активны в отношении всех микроорганизмов на поверхности протезов. Поэтому для дезинфекции следует использовать средства, которые будут эффективно очищать протезы и препятствовать их дальнейшему загрязнению.

Обзор научных работ по теме дезинфекции и обработки съёмных протезов показал, что наиболее распространёнными способами дезинфекции являются механический (с помощью щётки и пасты), химический, аппаратный и с помощью нанесения защитных лаков. Наиболее популярен химический способ дезинфекции. Согласно исследованиям С.Н. Разумовой. и соавт., дезинфекция протезов 0,05% раствором хлоргексидина широко распространена [14]. Раствор «Анолит АНК Супер» («Дельфин Аква», Россия) нашёл широкое применение в медицине и пищевой промышленности: он предназначен для дезинфекции помещений; оборудования, инструментов и помещений боен; тары; сточных вод; спецодежды; транспортных средств и других объектов [15]. Однако в изученной литературе мы не нашли данных об использовании данного средства для дезинфекции протезов, что определило новизну и актуальность применения раствора «Анолит АНК Супер» для дезинфекции частичных и полных съёмных протезов по сравнению с 0,05% раствором хлоргексидина.

Цель исследования — сравнить эффективность использования раствора «Анолит АНК Супер» и 0,05% хлоргексидина биглюконата для дезинфекции частичных и полных съёмных зубных протезов.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Дизайн исследования

Проведено обсервационное одноцентровое проспективное выборочное контролируемое слепое рандомизированное исследование.

Критерии соответствия

Критериями включения в исследование служили возраст участников от 50 до 80 лет, использование полных съёмных акриловых протезов, отсутствие аллергических реакций.

Условия проведения

Исследования выполнено на базе кафедры пропедевтики стоматологических заболеваний Российского университета дружбы народов имени Патриса Лумумбы в клинико-диагностическом центре университета.

Продолжительность исследования

Исследование проведено с ноября 2023 года по май 2024 года.

Описание медицинского вмешательства

Количественный и качественный состав микрофлоры определяли с использованием метода масс-спектрометрии микробных маркёров. Мазки брали с внутренней поверхности полных съёмных акриловых протезов верхней и нижней челюстей без предварительной гигиенической обработки, затем их упаковывали в пробирки, маркировали и в охлаждаемом контейнере доставляли в лабораторию. В лаборатории пробирки отсортировывали и проверяли на целостность. До момента проведения анализа их погружали в специальный термостат для обеспечения наиболее благоприятных условий и сохранения жизнеспособности бактерий. После этого пробирки с исследуемым материалом были загружены в газовый хромато-масс-спектрометр Маэстро-αMS («Интерлаб», Россия).

Основной исход исследования

С увеличением времени экспозиции протезов в растворах наблюдалось уменьшение количественных и качественных показателей микрофлоры на их поверхности.

Дополнительные исходы исследования

Благодаря снижению количества микроорганизмов на поверхности протезов улучшался их гигиенический статус.

Анализ в подгруппах

Пациентов случайным образом разделили на две группы. В группе 1 (основная, n = 30) проводили обработку и дезинфекцию протезов с помощью исследуемого раствора «Анолит АНК Супер». В группе 2 (n = 30) обработку протезов выполняли с помощью 0,05% раствора хлоргексидина.

Методы регистрации исходов

Для регистрации основных и дополнительных исходов осуществляли взятие мазков с поверхности протезов. Полученные образцы исследовали с помощью метода масс-спектрометрии.

Этическая экспертиза

По протоколу № 18 от 18 мая 2023 г. заседания комитета по этике медицинского института Российского университета дружбы народов имени Патриса Лумумбы принято решение одобрить научно-исследовательскую работу по теме «Сравнение эффективности дезинфицирующих средств для очистки полных съёмных акриловых протезов». Все участники исследования добровольно подписали форму информированного согласия до включения в работу.

Статистический анализ

Статистическую обработку результатов исследования проводили с помощью компьютерного пакета программ S tatistiсa 13 (StatSoft Unc., США). Распределение данных соответствовало нормальному закону, поэтому дескриптивная статистика включала в себя расчёт среднего арифметического и среднеквадратического отклонения. Для оценки различий между группами использовали параметрические критерии, в том числе t-критерий Стьюдента с поправкой Бонферрони при множественных сравнениях. Критический уровень статистической значимости р был равен 0,05.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Объекты исследования

Исследовали микробное обсеменение поверхности полных съёмных акриловых протезов. В группе 1 изучали микробную обсеменённость протезов, которые замачивали в растворе «Анолит АНК Супер» в течение 5 мин, 20 мин и 8 ч. В группе 2 оценивали микробную обсеменённость протезов, которые замачивали в 0,05% растворе хлоргексидина в течение 5 мин, 20 мин и 8 ч.

Основные результаты исследования

Результаты исследования показали, что использование 0,05% хлоргексидина и раствора «Анолит АНК Супер» для дезинфекции съёмных акриловых протезов снижает количество микроорганизмов на их поверхности.

До обработки на поверхности протезов было обнаружено (1846,0 ± 81,0) 10⁵ кл./г грибов и дрожжей, после 5-минутной экспозиции в 0,05% растворе хлоргексидина количество грибов и дрожжей снизилось до (1608,0 ± 65,0) 10⁵ кл./г (р = 0,00), а после 5-минутной экспозиции в растворе «Анолит АНК Супер» — до (312,0 ± 24,0) 10⁵ кл./г (р = 0,003). После 20-минутной экспозиции в 0,05% растворе хлоргексидина количество грибов и дрожжей снизилось до (967,0 ± 27,0) 10⁵ кл./г (р = 0,00), а после 20-минутной экспозиции в растворе «Анолит АНК Супер» — до (215,0 ± 35,0) 10⁵ кл./г (р = 0,04). После 8-часовой экспозиции в 0,05% растворе хлоргексидина количество грибов и дрожжей снизилось до (825,0 ± 126,0) 10⁵ кл./г (р = 0,00), а в растворе «Анолит АНК Супер» — до (125,0 ± 33,0) 10⁵ кл./г (р = 0,03). Данные представлены на рис. 1.

 

Рис. 1. Содержание грибов и дрожжей на поверхности протезов до и после обработки. © Эко-Вектор, 2025.

Fig. 1. The content of fungi and yeast on the surface of the dentures before and after treatment. © Eco-Vector, 2025.

 

До обработки протезов было обнаружено (154,0 ± 9,0) 10⁵ кл./г анаэробных микроорганизмов, после 5-минутной экспозиции в 0,05% растворе хлоргексидина количество анаэробных микроорганизмов снизилось до (101,0 ± 9,0) 10⁵ кл./г (р = 0,00), а после 5-минутной экспозиции в растворе «Анолит АНК Супер» — до (15,0 ± 1,0) 10⁵ кл./г (р = 0,005). После 20-минутной экспозиции в 0,05% растворе хлоргексидина количество анаэробных микроорганизмов снизилось до (90,0 ± 5,0) 10⁵ кл./г (р = 0,00), а после 20-минутной экспозиции в растворе «Анолит АНК Супер» — до (12,0 ± 3,0) 10⁵ кл./г (р = 0,004). После 8-часовой экспозиции в 0,05% растворе хлоргексидина количество анаэробных микроорганизмов снизилось до (58,0 ± 4,0) 10⁵ кл./г (р = 0,00), а после 8-часовой экспозиции в растворе «Анолит АНК Супер» — до (10,0 ± 3,0) 10⁵ кл./г (р= 0,006). Данные представлены на рис. 2.

 

Рис. 2. Содержание анаэробов на поверхности протезов до и после обработки. © Эко-Вектор, 2025.

Fig. 2. The content of anaerobes on the surface of the dentures before and after treatment. © Eco-Vector, 2025.

 

До обработки протезов было обнаружено (163,0 ± 30,0) 10⁵ кл./г актинобактерий, после 5-минутной экспозиции в 0,05% растворе хлоргексидина количество актинобактерий снизилось до (143,0 ± 7,0) 10⁵ кл./г (р = 0,00), а после 5-минутной экспозиции в растворе «Анолит АНК Супер» — до (16,0 ± 4,0) 10⁵ кл./г (р = 0,00002). После 20-минутной экспозиции в 0,05% растворе хлоргексидина количество актинобактерий снизилось до (102,0 ± 5,0) 10⁵ кл./г (р = 0,00), а после 20-минутной экспозиции в растворе «Анолит АНК Супер» — до (12,0 ± 3,0) 10⁵ кл./г (р = 0,006). После 8-часовой экспозиции в 0,05% растворе хлоргексидина количество актинобактерий снизилось до (30,0 ± 2,0) 10⁵ кл./г (р = 0,00), а после 8-часовой экспозиции в растворе «Анолит АНК Супер» — до (8,0 ± 3,0) 10⁵ кл./г (р = 0,03). Данные представлены на рис. 3.

 

Рис. 3. Содержание актинобактерий на поверхности протезов до и после обработки. © Эко-Вектор, 2025.

Fig. 3. The content of actinobacteria on the surface of the dentures before and after treatment. © Eco-Vector, 2025.

 

До обработки протезов было обнаружено (135,0 ± 11,0) 10⁵ кл./г кокк и бацилл, после 5-минутной экспозиции в 0,05% растворе хлоргексидина количество кокк и бацилл снизилось до (107,0 ± 8,0) 10⁵ кл./г (р = 0,00), а после 5-минутной экспозиции в растворе «Анолит АНК Супер» — до (15,0 ± 5,0) 10⁵ кл./г (р = 0,03). После 20-минутной экспозиции в 0,05% растворе хлоргексидина количество кокк и бацилл снизилось до (56,0 ± 4,0) 10⁵ кл./г (р = 0,00), а после 20-минутной экспозиции в растворе «Анолит АНК Супер» — до (8,0 ± 3,0) 10⁵ кл./г (р = 0,007). После 8-часовой экспозиции в 0,05% растворе хлоргексидина количество кокк и бацилл снизилось до (12,0 ± 2,0) 10⁵ кл./г (р = 0,00), а после 8-часовой экспозиции в растворе «Анолит АНК Супер» — до (3,0 ± 3,0) 10⁵ кл./г (р = 0,009). Данные представлены на рис. 4.

 

Рис. 4. Содержание кокк и бацилл на поверхности протезов до и после обработки. © Эко-Вектор, 2025.

Fig. 4. The content of both bacilli on the surface of the dentures before and after treatment. © Eco-Vector, 2025.

 

В ходе исследования установлена прямая корреляция между временем экспозиции и очищающей эффективностью раствора в обеих группах. 8-часовая экспозиция протезов в исследуемых растворах более эффективна, чем 20-минутная экспозиция (р = 0,003). В свою очередь 20-минутная экспозиция эффективнее, чем 5-минутная (р = 0,002). Оптимальным способом очистки и дезинфекции протезов является 8-часовая экспозиция в растворе «Анолит АНК Супер», которая оказывает максимально эффективное очищающее и дезинфицирующее действие (р = 0,0001).

Дополнительные результаты исследования

Поскольку со увеличением времени экспозиции протезов в используемых растворах наблюдается уменьшение микробной обсеменённости, то можно сделать вывод, что использование раствора «Анолит АНК Супер» для дезинфекции протезов улучшает гигиенический статус протеза.

Нежелательные явления

Нежелательных явлений не обнаружено.

ОБСУЖДЕНИЕ

Проведённые нами анализы микробиоты методом масс-спектрометрии микробных маркёров показали, что содержание следующих микрорганизмов: Bacillus megaterium, Staphylococcus epidermidis, Clostridium difficile, Prevotella spp., Corynebacterium spp., Bifidobacterium spp., цитомегаловирус, Nocardia asteroids, Propionibacterium freudenreichii, Eubacterium spp., Streptomyces spp. и микробных грибов (кампестерол) — более чем в 2 раза выше по сравнению с допустимой нормой на поверхности протезов, что ухудшает гигиеническое состояние полости рта. В результате проведения масс-спектрометрии и анализа полученных данных установлено, что раствор «Анолит АНК Супер» эффективен в отношении грибов, дрожжей, анаэробных микроорганизмов, актинобактерий, бацилл и кокк. Количество грибов и дрожжей после 5-минутной экспозиции в 0,05% растворе хлоргексидина снижается в 1,4 раза, после 20-минутной экспозиции — в 2,0 раза и после 8 ч замачивания в 0,05% растворе хлоргексидина — в 2,2 раза. При использовании раствора «Анолит АНК Супер» 5-минутная экспозиция показывает снижение грибов и дрожжей в 6,0 раза, 20-минутная — в 8,6 раза и 8-часовая экспозиция в растворе «Анолит АНК Супер» показывает снижение в 14,7 раза. Раствор «Анолит АНК Супер» показывает более высокую эффективность в отношении грибов и дрожжей по сравнению с 0,05% раствором хлоргексидина (р = 0,000000).

Количество анаэробных микроорганизмов после 5-минутной экспозиции в 0,05% растворе хлоргексидина уменьшилось в 1,5 раза, 20-минутной — в 1,7 раза, 8-часовая экспозиция показывает снижение анаэробов в 2,6 раза. Использование раствора «Анолит АНК Супер» в течение 5 мин показывает снижение анаэробных микроорганизмов в 10,0 раза, 20-минутная экспозиция — в 12,8 раза и 8-часовая экспозиция в растворе «Анолит АНК Супер» показывает снижение в 15,4 раза. Раствор «Анолит АНК Супер» более эффективен в отношении анаэробов по сравнению с 0,05% раствором хлоргексидина (р = 0,000000).

В отношении актинобактерий 0,05% раствор хлоргексидина показывает снижение количества бактерий в 1,1 раза после 5 мин экспозиции, в 1,5 раза — после 20 мин экспозиции и в 5,4 раза — после 8 ч замачивания протеза. Раствор «Анолит АНК Супер» снижает количество актинобактерий в 10раз после 5-минутной экспозиции, в 13 раз — после 20-минутной экспозиции и в 20 раз — после 8-часовой экспозиции. Раствор «Анолит АНК Супер более эффективен в отношении актинобактерий по сравнению с 0,05% раствором хлоргексидина (р = 0,000000).

Количество кокк и бацилл при использовании 0,05% раствора хлоргексидина снижается после 5-минутной экспозиции в 1,3 раза, после 20-минутной экспозиции — в 2,4 раза и в 11,2 раза — после 8 ч замачивания протеза. Раствор «Анолит АНК Супер» снижает количество кокк и бацилл в 9,0 раза после 5 мин замачивания, в 16,8 раза — после 20 мин и в 45,0 раза — после 8 ч экспозиции. Раствор «Анолит АНК Супер более эффективен в отношении кокк и бацилл по сравнению с 0,05% раствором хлоргексидина (р = 0,000000) (рис. 5–8).

 

Рис. 5. Съёмные протезы до обработки. © Эко-Вектор, 2025.

Fig. 5. Removable dentures before treatment. © Eco-Vector, 2025.

 

Рис. 6. Съёмные протезы через 5 мин обработки. © Эко-Вектор, 2025.

Fig. 6. Removable dentures after 5 minutes of treatment. © Eco-Vector, 2025.

 

Рис. 7. Съёмные протезы через 20 мин обработки. © Эко-Вектор, 2025.

Fig. 7. Removable dentures after 20 minutes of treatment. © Eco-Vector, 2025.

 

Рис. 8. Съёмные протезы через 8 ч экспозиции. © Эко-Вектор, 2025.

Fig. 8. Removable dentures after 8 h of exposure. © Eco-Vector, 2025.

 

Э.С. Каливраджиян и соавт. провели сравнение эффективности использования нового «состава» раствора (цетримид, ионы серебра, сукцинат хитозана) и 0,05% раствора хлоргексидина биглюконата для дезинфекции протезов. Согласно данным, приведённым в работе, раствор хлоргексидина биглюконата воздействует на Staphylococcus aureus, S. mutans, Streptococcus sanguis, C. albicans, C. tropicalis, Escherichia coli. Однако качественный состав микробной флоры не изменяется, снижаются только количественные показатели, что подтверждено и нашими данными. В свою очередь раствор «Анолит АНК Супер» эффективнее очищает и дезинфицирует съёмные протезы, так как воздействует на больший спектр микроорганизмов [16].

M.D.R. Ruiz Núñez и соавт. исследовали эффективность влияния 0,05% раствора хлоргексидина биглюконата. Они пришли к выводу, что дезинфекция ротовой полости, а следовательно, и собственно протезов этим раствором не приводит к эффективному очищению. Бактериостатическое действие 0,05% раствора хлоргексидина превалирует над бактерицидным [17]. В нашем исследовании подтверждена эффективность хлоргексидина при длительной экспозиции воздействия. В свою очередь раствор «Анолит АНК Супер» эффективнее уничтожает патогенные микроорганизмы на поверхности съёмных протезов по сравнению с хлоргексидином.

G.D.S. Ribeiro Rocha и соавт. провели литературный обзор по способам дезинфекции съёмных протезов и пришли к выводу, что щелочные пероксиды не активны в отношении Candida spp., хлоргексидин в концентрации 0,05% и диоксид хлора значительно снижают количество колониеобразующих единиц микроорганизмов. Однако в нашем исследовании мы получили данные, что экспозиция протезов в растворе «Анолит АНК Супер» в течение 5 мин, 20 мин и 8 ч эффективнее, чем в растворе хлоргексидина при том же периоде экспозиции [18].

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Раствор «Анолит АНК Супер» эффективен в отношении грибов и дрожжей на поверхности протеза, анаэробных микроорганизмов, актинобактерий, кокк и бацилл, количество которых уменьшается пропорционально времени экспозиции протеза в растворе (р = 0,0001). Наиболее эффективна экспозиция протезов в растворе «Анолит АНК Супер» в течение 8 ч.

ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ИНФОРМАЦИЯ

Источник финансирования. Отсутствует.

Раскрытие интересов. Авторы заявляют об отсутствии отношений, деятельности и интересов (личных, профессиональных или финансовых), связанных с третьими лицами (коммерческими, некоммерческими, частными), интересы которых могут быть затронуты содержанием статьи, а также иных отношений, деятельности и интересов за последние три года, о которых необходимо сообщить.

Участие авторов. С.Н. Разумова — редактирование научной работы; А.С. Браго — подбор отечественной научной литературы; Д.В. Серебров — статистическая обработка полученных данных; Е.А. Морозова — перевод научной работы; М.Д. Байкулова — подбор зарубежной научной литературы; К.Д. Серебров — оформление научной работы. Все авторы одобрили рукопись (версию для публикации), а также согласились нести ответственность за все аспекты работы и гарантировали, что вопросы, связанные с точностью или добросовестностью любой части работы, будут должным образом рассмотрены и решены.

ADDITIONAL INFORMATION

Funding source. None.

Disclosure of interests. The authors have no relationships, activities or interests (personal, professional or financial) with for-profit or not-for-profit third parties whose interests may be affected by the content of the manuscript, as well as other relationships, activities or interests for the last three years that needed to disclose.

Authors’ contribution. S.N. Razumova — editing of scientific work; A.S. Brago — selection of russian scientific literature; D.V. Serebrov — statistical processing of the obtained data; E.A. Morozova — translation of scientific work; M.D. Baykulova — selection of foreign scientific literature, K.D. Serebrov — design of scientific work. Thereby, all authors provided approval of the version to be published and agree to be accountable for all aspects of the work in ensuring that questions related to the accuracy or integrity of any part of the work are appropriately investigated and resolved.

About the authors

Svetlana N. Razumova

Peoples’ Friendship University of Russia

Email: razumova_sv@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-9533-9204
SPIN-code: 6771-8507

MD, Dr. Sci. (Medicine), Professor

Russian Federation, Moscow

Anzhela S. Brago

Peoples’ Friendship University of Russia

Email: anzhela_bogdan@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-8947-4357
SPIN-code: 2437-8867

MD, Cand. Sci. (Medicine), Associate Professor

Russian Federation, Moscow

Dmitry V. Serebrov

Peoples’ Friendship University of Russia

Email: dserebrov@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-1030-1603
SPIN-code: 2161-9997

MD, Cand. Sci. (Medicine)

Russian Federation, Moscow

Malina D. Baikulova

Peoples’ Friendship University of Russia

Email: baykulova@rudn.ru
ORCID iD: 0000-0002-2195-4423
SPIN-code: 6942-8308
Russian Federation, Moscow

Elena A. Morozova

Peoples’ Friendship University of Russia

Email: morozova-elan@rudn.ru
ORCID iD: 0000-0002-5312-9516
SPIN-code: 5490-3554

MD, Dr. Sci. (Medicine), Professor

Russian Federation, Moscow

Kirill D. Serebrov

Peoples’ Friendship University of Russia

Author for correspondence.
Email: k.serebrov@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-0353-1339
SPIN-code: 8649-7284
Russian Federation, Moscow

References

Supplementary files