Клинико-микробиологические аспекты формирования микробной биопленки на конструкционных материалах, используемых для починки и перебазировки съемных зубных протезов



Цитировать

Полный текст

Аннотация

В статье представлены результаты экспериментального изучения in vitro первичной адгезии к материалам для починки и перебазировки съемных зубных протезов - GC Reline, Ufi gel, Ufi Hard, Rebase, Протакрилу. В качестве тест-штаммов использовали пародонтопатогенные (P.gingivalis, F.nucleatum, S.intermedius) и резидентные виды бактерий (S.sanguinis), а также дрожжевые грибы C.albicans. Установлено, что материалы GC Reline, Ufi gel, Ufi Hard отличаются низким уровнем адгезии пародонтопатогенных видов, грибов рода Candida и умеренным уровнем - стрептококков полости рта.

Полный текст

Несмотря на бурное развитие медицинских технологий в последние десятилетия, замещение дефектов зубных рядов большой протяженности и полного отсутствия зубов съемными конструкциями протезов остается актуальным и на сегодняшний день. Спектр конструкционных материалов, используемых для такого вида протезирования, значительно увеличился, однако в большинстве случаев они имеют акриловую природу [1, 2]. Данное обстоятельство обусловлено относительной дешевизной базисной пластмассы, ее высокой устойчивостью к агрессивной среде полости рта, простотой технологии, а также возможностью коррекции границ, перебазировки и починки после поломок. Последнее крайне актуально при ортопедическом лечении после хирургической подготовки пациента (множественное удаление зубов, коррекция альвеолярного отростка верхней челюсти и альвеолярной части нижней челюсти, изготовление иммедиат-протезов). При эксплуатации съемных протезов происходит более быстрая атрофия костной ткани верхней и нижней челюстей, что приводит к несоответствию контуров протезного ложа и самого протеза и вызывает прогрессирующее ухудшение фиксации этих ортопедических конструкций, а иногда и поломку. Выходом из данной ситуации может служить изготовление нового протеза или проведение процедуры починки и перебазировки [3]. Изготовление нового съемного протеза сопряжено с фи- Для корреспонденции: Афанасьева В.В. For correspondence: Afanasieva V.V. нансовыми, временными и психологическими трудностями для пациента и не всегда оправдано. Починка и перебазировка, напротив, дают хорошие результаты, являются в технологическом плане несложной и выгодной во временном, экономическом и психоэмоциональном аспектах процедурой для пациента. Следует отметить, что речь идет о починке и перебазировке, выполняемых с использованием специальных конструкционных полимерных материалов. Полимеризация данных материалов выполняется только химическим способом, без физических факторов (температура, давление). Это приводит к тому, что внутренняя часть протеза (на участках починки и перебазировки) становится более пористой по сравнению с базисным материалом протеза и способна влиять на изменение состава микрофлоры рта вследствие изменения степени адгезии основных представителей патогенной микрофлоры к данным материалам [1, 5]. В связи с этим целью данной работы явилась оценка степени адгезии основных представителей стабилизирующей и патогенной микрофлоры рта к некоторым материалам, применяемым для починки и перебазировки протезов. Материал и методы Для экспериментальных исследований были выбраны следующие конструкционные материалы, из которых для оценки первичной адгезии in vitro готовили образцы в виде гладких отшлифованных дисков диаметром 5 мм: GC Reline («GC Company»), Ufi Hard («VOCO»), Ufi gel («VOCO»), Rebase («Rebaron»), Протакрил (Украина). В исследованиях in vitro мы использовали выделенные Результаты экспериментов in vitro по изучению адгезии представителей микрофлоры полости рта к материалам, используемым для перебазировки съемных протезов прямым методом Материал Микроорганизмы, индекс адгезии P. gingivalis F. nucleatum | S. intermedius | S. sanguinis | C. albicans GC Reline 0,84 ± 0,05 0,70 ± 0,04* 0,66 ± 0,04* 0,50 ± 0,04* 0,60 ± 0,05* Ufi Hard 0,53 ± 0,04* 0,43 ± 0,03* 0,70 ± 0,05 0,53 ± 0,04* 0,30 ± 0,04* Ufi gel 0,26 ± 0,04* 0,65 ± 0,05* 0,74 ± 0,05 0,55 ± 0,04* 0,30 ± 0,04* Rebase 0,60 ± 0,04* 0,78 ± 0,04 0,44 ± 0,03* 0,70 ± 0,05 0,30 ± 0,04* Протакрил 0,90 ± 0,05 0,82 ± 0,05 0,80 ± 0,05 0,80 ± 0,05 0,80 ± 0,05 П р и м е ч ан и е. * - значения достоверно ниже по сравнению с контролем - протакрилом (р < 0,05). 1 0,9 0,8 0,7 0,6 0,5 0,4 0,3 0,2 0,1 0 С. albicans S. intermedius S. sanguinis | GC Reline Ufi Hard Щ Ufi gel P. gingivalis F. nucleatum I Rebase ] Протакрил Сравнительные данные об адгезии представителей микрофлоры полости рта к материалам, используемым для перебазировки съемных протезов прямым методом. от пациентов штаммы микроорганизмов, которые по отечественной рабочей классификации [4, 5] относились к: 1) пародонтопатогенной микробной флоре: • пигментообразующие бактероиды - грамотрицательные анаэробные бактерии - Porphyromonas gingivalis; • веретенообразные палочки - грамотрицательные анаэробные бактерии - Fusobacterium nucleatum/periodonticum; • грамположительные анаэробные кокки - Streptococcus intermedius; 2) резидентной стабилизирующей микробной флоре: • грамположительные микроаэрофильные стрептококки - Streptococcus sanguinis; 3) дрожжевым грибам: • Candida albicans. Для выяснения возможности формирования микробной биопленки мы провели экспериментальные исследования специально изготовленных образцов конструкционных материалов (форма полусферы, диаметр 0,5 см), которые были отполированы после полимеризации с помощью полировочных дисков и паст. После инкубации образцов в среде АС, содержащей взвесь бактерий определенного штамма в известной концентрации, экспозицию проводили в анаэробных условиях при 37оС в течение 40 мин. Затем образцы троекратно промывали стерильным изотоническим раствором и помещали в емкости со стерильной средой АС (по 1 мл). Данные емкости устанавливали в ультразвуковую ванночку фирмы «Геософт» (Россия) и озвучивали (10 мин, мощность 60 кГц). Далее из каждой емкости, содержащей образец исследуемого материала, брали 40 мкл среды АС с помощью микропипетки и осуществляли количественный высев на 5% кровяной гемин-агар. Культивирование бактерий проводили в анаэробных условиях при 37оС в течение 5 сут. Результаты учитывали путем определения индекса адгезии, который представляет собой отношение десятичного логарифма количества колониеобразующих единиц (КОЕ), полученных после озвучивания исследуемых образцов, к десятичному логарифму количества КОЕ исходной микробной взвеси [3, 4]. Исследования адгезии грибов рода Candida к образцам выполняли аналогично на среде Сабуро, а культивирование проводили в аэробных условиях в течение 2 сут при комнатной температуре. Для статистической обработки результатов применяли метод вариационной статистики с определением вероятности различий р. Результаты и обсуждение На экспериментальном этапе исследования были получены данные, представленные в таблице. Разница в степени адгезии основного паро- донтопатогенного вида P. gingivalis к исследуемым материалам оказалась наиболее значимой по сравнению с другими тест-штаммами и составила 0,26 для Ufi gel, 0,53 для Ufi Hard, для Rebase и GC Reline она была достоверно больше - 0,60 и 0,84 (р < 0,05). Самый высокий уровень адгезии 0,90 был установлен для Протакрила, который был выбран нами в качестве контрольного. Другой пародонтопатогенный вид F. nucleatum/periodonticum также проявлял крайне высокую адгезию к Протакри- лу (индекс адгезии составил 0,82). Показатель для Rebase был несколько ниже - 0,78. Самым низким индекс адгезии в этой группе оказался у материала Ufi Hard и составил 0,43, а у Ufi gel и GC Reline был равен 0,65 и 0,70 соответственно (р < 0,05). Грамположительный представитель пародонтопатоген- ной флоры S. intermedius, напротив, обладал наиболее выраженной адгезией к материалам GC Reline (0,66), Ufi gel (0,74), Ufi Hard (0,70) и Протакрилу (0,80), а наиболее низкой - к Rebase (0,44). Результаты изучения адгезии представителей стабилизирующей микрофлоры для большинства исследуемых материалов были умеренными, а для Rebase и Протакрила - высокими. Так, индексы адгезии S. sanguinis были примерно одинаковыми для материалов GС Reline, Ufi gel, Ufi Hard и колебались от 0,50 до 0,55, а для образцов Rebase и Прота- крила оказались значительно выше и составляли 0,70 и 0,80 соответственно (р < 0,05). Высокий уровень адгезии стабилизирующей флоры следует, на наш взгляд, рассматривать как благоприятный фактор, так как при формировании биопленки в естественных условиях ротовой полости он, вероятнее всего, будет угнетать колонизацию ортопедических конструкций вирулентными представителями микробов пародонтопатогенной группы. Установлено, что индекс адгезии грибов C. albicans к исследуемым материалам оказался крайне высоким у Прота- крила и GC Reline и составил 0,80 и 0,60 соответственно. Для полимерных материалов Ufi Hard, Ufi gel и Rebase он был достоверно ниже - 0,30 (р < 0,05). Заключение Основные представители пародонтопатогенной микрофлоры полости рта, которые могут формировать биопленку, обладают выраженной способностью к адгезии к некоторым конструкционным материалам, используемым для перебазировки и починки зубных протезов. Так, минимальные значения индекса микробной адгезии выявлены у материалов для перебазировки Ufi Hard, Ufi gel и несколько выше у материала Rebase. Представитель резидентной микробной флоры S. sanguinis, напротив, отличался высоким индексом адгезии, однако это можно рассматривать как благоприятный фактор, поскольку данный вид проявляет антагонистическое действие в отношении колонизации пародонтопатогенами и грибами (см. рисунок). Вместе с тем в связи с возможностью формирования микробной биопленки с участием пародонтопатогенных видов и грибов проведение починки и перебазировки определяет необходимость дополнительных гигиенических мероприятий для поддержания нормального качественного и количественного состава микробной флоры полости рта на период проводимого ортопедического стоматологического лечения в виде активного применения ополаскивателей и ирригаторов, содержащих антисептические средства и препараты, снижающие адгезию микробов к съемным зубным протезам, например содержащие триклозан, листерин, гексэтидин, ми- рамистин, тантум верде и др.
×

Об авторах

В. В Афанасьева

ГБОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова»

127206, г. Москва

Д. С Арутюнов

ГБОУ ДПО «Российская медицинская академия последипломного образования» Минздрава России

125993, г. Москва

М. С Деев

ГБОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова»

127206, г. Москва

Е. В Ипполитов

ГБОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова»

127206, г. Москва

Т. В Царева

ГБОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова»

127206, г. Москва

Список литературы

  1. Арутюнов С.Д., Ипполитов Е.В., Пивоваров А.А., Царёв В.Н. Взаимосвязь шероховатости и рельефа поверхности базисного стоматологического полиметилметакрилатного полимера и формирования микробной биоплёнки при разных способах полировки образцов. Казанский медицинский журнал. 2014; 95(2): 224-31.
  2. Ламонт Р.Дж., Берне А., Лантц С., Лебланк Д.Дж. Микробиология и иммунология для стоматологов. М.: Практическая медицина; 2010.
  3. Лёвкин А.В., Царёв В.Н., Гринин В.М. Оценка активности развития кариесогенной микрофлоры на поверхности пломб из современных композитных пломбировочных материалов в условиях клиники и эксперимента. Стоматология для всех. 2013; 3: 68-72.
  4. Ушаков Р.В., Царёв В.Н. Антимикробная терапия в комплексном лечении воспалительных заболеваний пародонта. Учебное пособие для системы послевузовского образования. М.: МГМСУ; 2014.
  5. Царев В.Н., Ибрагимов Т.И., Трефилов А.Г. Применение методов микробиологического мониторинга в процессе ортопедического лечения пациентов с вторичной полной адентией. Стоматолог. 2008; 2: 45-6.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© ООО "Эко-Вектор", 2015



СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 86295 от 11.12.2023 г
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ЭЛ № ФС 77 - 80635 от 15.03.2021 г
.



Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах