Современные возможности и перспективы замещения альвеолярных челюстных дефектов и покровных тканей полости рта: обзор литературы

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Для достижения функциональных результатов реабилитации дентоальвеолярной области широко применяется дентальная имплантация. При этом процент нуждающихся в увеличении объёма опорных тканей остаётся высоким — от 43 до 77, а используемые в настоящее время подходы для аугментации тканевых структур не всегда демонстрируют ожидаемые результаты. Частой причиной проблем с формированием тканевых структур в ходе заживления служит сниженная активность индуцирующих факторов локального и системного уровней в организме человека. Критический дефицит покровных тканей полости рта существенно влияет на результат восстановительно-реконструктивных хирургических вмешательств. В связи с этим актуален регенеративный подход с использованием биоматериалов с индуцирующими свойствами для моделирования ранних процессов неоваскуляризации и остеогистогенеза, что обеспечит функциональный результат лечения.

В обзоре охарактеризованы современные достижения реконструкции объёмных тканевых дефектов, включая биоинженерное направление для регенерации альвеолярной челюстной кости и покровных тканей полости рта.

Проведён поиск источников литературы в базе данных PubMed с использованием ключевых слов, упомянутых в заголовках PubMed и MeSH: посттравматический остеогенез, неоваскуляризация, направленная регенерация кости, остеозамещающие биоматериалы, мезенхимальные стволовые клетки, тканеинженерные конструкции. Были запрошены форматы review, systematic review и clinical trial. Глубина поиска составила 20 лет.

Из 388 найденных статей 44 соответствовали критериям включения, установленным для этого обзора. Изложены предпосылки к реконструкции альвеолярного гребня с акцентом на раннюю васкуляризацию тканей de novo, дана характеристика преимуществ и недостатков костных и мягкотканных трансплантатов, используемых остеозамещающих биоматериалов для аугментации кости и покровных тканей полости рта. Представлены результаты исследовательских усилий в рамках применения мезенхимальных стволовых клеток, играющих решающую роль в регенерации альвеолярной кости и десны. Приведены данные об эволюции тканеинженерных конструкций для покровных структур полости рта: от тонких пластов эпителиальных клеток или соединительнотканного децеллюляризированного матрикса до 3D-эпителизированных эквивалентов слизистой оболочки полости рта.

Быстро увеличивающееся число исследований свойств биоматериалов различного химизма, факторов роста, стволовых клеток и активное развитие тканеинженерного направления в настоящее время свидетельствуют о перспективности научной мысли для разработки биоматериалов следующих поколений, которые смогут эффективно взаимодействовать с собственными механизмами регенерации тканей как биологического принципа в их уникальной архитектуре.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Артем Юрьевич Ананич

Кубанский государственный медицинский университет

Email: laptoo@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5166-2894
SPIN-код: 7324-7491
Россия, Краснодар

Марина Дмитриевна Перова

Кубанский государственный медицинский университет; ООО «Стоматологический Центр “Intélligent”»

Email: mperova2013@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-6974-6407
SPIN-код: 5552-7988

д-р мед. наук, доцент

Россия, Краснодар; Краснодар

Игорь Александрович Севостьянов

ООО «Стоматологический Центр “Intélligent”»

Email: drsevostyanovia@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-8472-7279
SPIN-код: 9174-3102

канд. мед. наук

Россия, Краснодар

Ирина Валериевна Гилевич

Кубанский государственный медицинский университет; Научно-исследовательский институт — Краевая клиническая больница № 1 имени профессора С.В. Очаповского

Автор, ответственный за переписку.
Email: giliv@list.ru
ORCID iD: 0000-0002-9766-1811
SPIN-код: 3911-1488

канд. мед. наук

Россия, Краснодар; Краснодар

Список литературы

  1. Бозо И.Я. Разработка и применение ген-активированного остеопластического материала для замещения костных дефектов: автореф. дис. … канд. мед. наук. Москва, 2017. 24 с.
  2. Иванов С.Ю., Мураев А.А., Ямуркова Н.Ф. Реконструктивная хирургия альвеолярной кости [интернет]. Москва, ГЭОТАР-Медиа, 2 01٦. 3٦ 0 с. Режим доступа: https://www.studentlibrary.ru/book/ISBN9785970438138.html
  3. Schmitz J.P., Hollinger J.O. The critical size defect as an experimental model for cranio-mandibulo-facial non unions // Clin Orthop Relat Res. 1986. Vol. 205. P. 299–308. doi: 10.1097/00003086-198604000-00036
  4. Dimitriou R., Jones E., McGonagle D., Giannoudis P.V. Bone regeneration: current concepts and future directions // BMC Med. 2011. Vol. 9. P. 66. doi: 10.1186/1741-7015-9-66
  5. Гололобов В.Г., Дедух Н.В., Деев Р.В. Скелетные ткани и органы. Руководство по гистологии, 2-е издание. Т. 1. Санкт-Петербург: СпецЛит, 2011.
  6. Ueda M., Tohnai I., Nakai H. Tissue engineering research in oral implant surgery // Artif Organs. 2001. Vol. 25, N 3. P. 164–171. doi: 10.1046/j.1525-1594.2001.025003164.x
  7. Liu J., Bian Z., Kuijpers-Jagtman A.M., Von den Hoff J.W. Skin and oral mucosa equivalents: construction and performance // Orthod Craniofac Res. 2010. Vol. 13, N 1. P. 11–20. doi: 10.1111/j.1601-6343.2009.01475.x
  8. Schropp L., Wenzel A., Kostopoulos L., Karring T. Bone healing and soft tissue contour changes following single-tooth extraction: a clinical and radiographic 12-month prospective study // Int J Periodontics Restorative Dent. 2003. Vol. 23, N 4. P. 313–323.
  9. Ashman A. Ridge preservation: important buzzwords in dentistry // Gen Dent. 2000. Vol. 48, N 3. P. 304–312.
  10. Fernández-Iglesias A., Fuente R., Gil-Peña H., et al. The formation of the epiphyseal bone plate occurs via combined endochondral and intramembranous-like ossification // Int J Mol Sci. 2021. Vol. 22, N 2. P. 900. doi: 10.3390/ijms22020900
  11. Kerschnitzki M., Wagermaier W., Roschger P., et al. The organization of the osteocyte network mirrors the extracellular matrix orientation in bone // J Struct Biol. 2011. Vol. 173, N 2. P. 303–311. doi: 10.1016/j.jsb.2010.11.014
  12. Li X., Yang S., Jing D., et al. Type II collagen-positive progenitors are major stem cells to control skelet on development and vascular formation // bioRxiv. 2020. doi: 10.1101/2020.09.06.284588
  13. Yu Y.Y., Lieu S., Hu D., et al. Site specific effects of zoledronic acid during tibial and mandibular fracture repair // PLoS One. 2012. Vol. 7, N 2. P. e31771. doi: 10.1371/journal.pone.0031771
  14. Forriol F., Denaro L., Longo U.G., et al. Bone lengthening osteogenesis, a combination of intramembranous and endochondral ossification: an experimental study in sheep // Strategies Trauma Limb Reconstr. 2010. Vol. 5, N 2. P. 71–78. doi: 10.1007/s11751-010-0083-y
  15. Runyan C.M., Gabrick K.S. Biology of bone formation, fracture healing, and distraction osteogenesis // J Craniofac Surg. 2017. Vol. 28, N 5. P. 1380–1389. doi: 10.1097/SCS.0000000000003625
  16. Florencio-Silva R., Sasso G.R., Sasso-Cerri E., et al. Biology of bonetissue: structure, function, and factors that influence bone cells // Biomed Res Int. 2015. Vol. 2015. P. 421746. doi: 10.1155/2015/421746
  17. Rho J.Y., Kuhn-Spearing L., Zioupos P. Mechanical properties and the hierarchical structure of bone // Med Eng Phys. 1998. Vol. 20, N 2. P. 92–102. doi: 10.1016/s1350-4533(98)00007-1
  18. Lees S., Prostak K. The locus of mineral crystallites in bone // Connect Tissue Res. 1988. Vol. 18, N 1. P. 41–54. doi: 10.3109/03008208809019071
  19. Boskey A.L. Bone composition: relationship to bone fragility and antiosteoporotic drug effects // Bonekey Rep. 2015. Vol. 4. P. 710. doi: 10.1038/bonekey.2015.79
  20. Clarke B. Normal bone anatomy and physiology // Clin J Am Soc Nephrol. 2008. Vol. 3, Suppl. 3. P. S131–S139. doi: 10.2215/CJN.04151206
  21. Morgan E.F., Unnikrisnan G.U., Hussein A.I. Bone mechanical properties in healthy and diseased states // Annu Rev Biomed Eng. 2018. Vol. 20. P. 119–143. doi: 10.1146/annurev-bioeng-062117-121139
  22. Garcia-Gareta E., Coathup M.J., Blunn G.W. Osteoinduction of bone grafting materials for bone repair and regeneration // Bone. 2015. Vol. 81. P. 112–121. doi: 10.1016/j.bone.2015.07.007
  23. Pereira H.F., Cengiz I.F., Silva F.S., et al. Scaffolds and coatings for bone regeneration // J Mater Sci Mater Med. 2020. Vol. 31, N 3. P. 27. doi: 10.1007/s10856-020-06364-y
  24. Ehrler D.M., Vaccaro A.R. The use of allograft bone in lumbar spine surgery // Clin Orthop Relat Res. 2000. N 371. P. 38–45. doi: 10.1097/00003086-200002000-00005
  25. Piattelli M., Favero G.A., Scarano A., et al. Bone reactions to anorganic bovine bone (Bio-Oss) used in sinus augmentation procedures: a histologic long-term report of 20 cases in humans // Int J Oral Maxillofac Implants. 1999. Vol. 14, N 6. P. 835–840.
  26. Oryan A., Alidadi S., Moshiri A., Maffulli N. Bone regenerative medicine: classic options, novel strategies, and future directions // J Orthop Surg Res. 2014. Vol. 9, N 1. P. 18. doi: 10.1186/1749-799X-9-18
  27. El-Ghannam A. Bonereconstruction: from bioceramics to tissue engineering // Expert Rev Med Devices. 2005. Vol. 2, N 1. P. 87–101. doi: 10.1586/17434440.2.1.87
  28. Hudecki A., Kiryczyński G., Łos M.J. Stem cells and biomaterials for regenerative medicine. AcademicPress. Cambridge, MA, USA: 2018. Biomaterials, Definition, Overview. doi: 10.1016/B978-0-12-812258-7.00007-1
  29. Kokubo T., Kim H.M., Kawashita M. Novel bioactive materials with different mechanical properties // Biomaterials. 2003. Vol. 24, N 13. P. 2161–2175. doi: 10.1016/s0142-9612(03)00044-9
  30. Gao C., Peng S., Feng P., Shuai C. Bone biomaterials and interactions with stem cells // Bone Res. 2017. Vol. 5. P. 17059. doi: 10.1038/boneres.2017.59
  31. Barrere F., Van Blitterswijk C.A., De Groot K. Bone regeneration: molecular and cellular interactions with calcium phosphate ceramics // Int J Nanomedicine. 2006. Vol. 1, N 3. P. 317–332.
  32. Shuai C.J., Li P.J., Liu J.L., Peng S.P. Optimization of TCP/HAP ratio for better properties of calcium phosphate scaffold via selective laser sintering // Mater Charact. 2013. Vol. 77, P. 23–31. doi: 10.1016/j.matchar.2012.12.009
  33. Hench L.L., Splinter R.J., Allen W.C., Greenlee T.K. Bonding mechanism satthe interface of ceramic prosthetic materials // J Biomed Mater Res. 1971. Vol. 5. P. 117–141. doi: 10.1002/jbm.820050611
  34. Zhang J., Guan J., Zhang C., et al. Bioactive borate glass promotes the repair of radius segmental bone defects by enhancing the osteogenic differentiation of BMSCs // Biomed Mater. 2015. Vol. 10, N 6. P. 065011. doi: 10.1088/1748-6041/10/6/065011
  35. Перова М.Д. Исходы хирургического лечения пародонтита с применением остеозамещающих имплантационных материалов // Новое в стоматологии. 1999. № 2. С. 36–43. EDN: VVRBDL
  36. Tsukasaki M., Takayanagi H. Osteoimmunology: evolving concept sinbone-immune inter actions in health and disease // Nat Rev Immunol. 2019. Vol. 19, N 10. P. 626–642. doi: 10.1038/s41577-019-0178-8
  37. Saran U., Gemini Piperni S., Chatterjee S. Role of angiogenesis in bone repair // Arch Biochem Biophys. 2014. Vol. 561. P. 109–117. doi: 10.1016/j.abb.2014.07.006
  38. Li D., Deng L., Xie X., et al. Evaluation of the osteogenesis and angiogenesis effects of erythropoietin and the efficacy of deproteinized bovine bone/recombinant human erythropoietin scaffold on bone defect repair // J Mater Sci Mater Med. 2016. Vol. 27, N 6. P. 101. doi: 10.1007/s10856-016-5714-5
  39. Diomede F., Marconi G.D., Fonticoli L., et al. Functional relationship between osteogenesis and angiogenesis in tissue regeneration // Int J Mol Sci. 2020. Vol. 21, N 9. P. 3242. doi: 10.3390/ijms21093242
  40. Woo E.J. Adverse events reported after the use of recombinant human bone morphogenetic protein-2 // J Oral Maxillofac Surg. 2012. Vol. 70, N 4. P. 765–767. doi: 10.1016/j.joms.2011.09.008
  41. Gothard D., Smith E.L., Kanczler J.M., et al. Tissue engineered bone using select growth factors: a comprehensive review of animal studies and clinical translation studies in man // Eur Cell Mater. 2014. Vol. 28. P. 166–208. doi: 10.22203/ecm.v028a13
  42. Kim S., Lee S., Kim K. Bone tissue engineering strategies in co-delivery of bone morphogenetic protein-2 and biochemical signaling factors // Adv Exp Med Biol. 2018. Vol. 1078. P. 233–244. doi: 10.1007/978-981-13-0950-2_12
  43. De Witte T.M., Fratila-Apachitei L.E., Zadpoor A.A., Peppas N.A. Bone tissue engineering via growth factor delivery: from scaffolds to complex matrices // Regen Biomater. 2018. Vol. 5, N 4. P. 197–211. doi: 10.1093/rb/rby013
  44. Shah P., Keppler L., Rutkowski J. Bone morphogenic protein: an elixir for bone grafting — a review // J Oral Implantol. 2012. Vol. 38, N 6. P. 767–778. doi: 10.1563/AAID-JOI-D-10-00196
  45. Chen G., Deng G., Deng C., Li Y.P. TGF-β and BMP signaling in osteoblast differentiation and bone formation // Int J Biol Sci. 2012. Vol. 8, N 2. P. 272–288. doi: 10.7150/ijbs.2929
  46. Ho-Shui-Ling A., Bolander J., Rustom L.E., et al. Bone regeneration strategies: engineered scaffolds, bioactive molecules and stem cells current stage and future perspectives // Biomaterials. 2018. Vol. 180. P. 143–162. doi: 10.1016/j.biomaterials.2018.07.017
  47. Zhang R., Li X., Liu Y., et al. Acceleration of bone regeneration in critical-size defect using BMP-9-loaded nHA/ColI/MWCNTs scaffolds seeded with bone marrow mesenchymal stem cells // Bio Med Res Int. 2019. Vol. 2019. P. 7343957. doi: 10.1155/2019/7343957
  48. Madame Curie Biosci Database [Internet]. Duffy A.M., Bouchier-Hayes D.J., Harmey J.H. Vascular endothelial growth factor (VEGF) and its role in non-endothelial cells: autocrine signalling by VEGF. 2013. Available online: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK6482/
  49. Tatullo M., Marrelli B., Palmieri F., et al. Promising scaffold-free approaches in translational dentistry // Int J Environ Res Public Health. 2020. Vol. 17, N 9. P. 3001. doi: 10.3390/ijerph17093001
  50. Hu K., Olsen B.R. The roles of vascular endothelial growth factor in bone repair and regeneration // Bone. 2016. Vol. 91. P. 30–38. doi: 10.1016/j.bone.2016.06.013
  51. Matsumoto K., Ema M. Roles of VEGF-A signalling in development, regeneration, and tumours // J Biochem. 2014. Vol. 156, N 1. P. 1–10. doi: 10.1093/jb/mvu031
  52. Uccelli A., Wolff T., Valente P., et al. Vascular endothelial growth factor biology for regenerative angiogenesis // Swiss Med Wkly. 2019. Vol. 149. P. w20011. doi: 10.4414/smw.2019.20011
  53. Grosso A., Burger M.G., Lunger A., et al. It takes two to tango: coupling of angiogenesis and osteogenesis for bone regeneration // Front Bioeng Biotechnol. 2017. Vol. 5. P. 68. doi: 10.3389/fbioe.2017.00068
  54. Atluri K.J., Lee D., Seabold D., et al. Gene-activated titanium surfaces promote in vitro osteogenesis // Int J Oral Maxillofac Implants. 2017. Vol. 32, N 2. P. e83–e96. doi: 10.11607/jomi.5026
  55. Бозо И.Я., Рожков С.И., Комлев В.С., и др. Сравнительная оценка биологической активности ген-активированных остеопластических материалов из октакальциевого фосфата и плазмидных ДНК, несущих гены VEGF и SDF: часть 2 — in vivo // Гены и Клетки. 2017. Т. 12, № 4. С. 39–46. EDN: YYOQKD doi: 10.23868/201707028
  56. Saberianpour S., Heidarzadeh M., Geranmayeh M.H., et al. Tissue engineering strategies for the induction of angiogenesis using biomaterials // J Biol Eng. 2018. Vol. 12. P. 36. doi: 10.1186/s13036-018-0133-4
  57. Diomede F., D’Aurora M., Gugliandolo A., et al. Biofunctionalized scaffoldin bone tissue repair // Int J Mol Sci. 2018. Vol. 19, N 4. P. 1022. doi: 10.3390/ijms19041022
  58. Карпюк В.Б., Перова М.Д., Козлов А.В., и др. Экспериментальная модель реконструкции кости путем остеогенной трансформации аутотрансплантированных свежевыделенных стромальных клеток жировой ткани // Анналы пластической и реконструктивной хирургии. 2007. № 4. С. 14–18. EDN: KZQUHL
  59. Деев Р.В., Исаев А.А., Кочиш А.Ю., Тихилов Р.М. Клеточные технологии в травматологии и ортопедии: пути развития // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. 2007. Т. 2, № 4. С. 18–30. EDN: IBYKDN
  60. Perez J.R., Kouroupis D., Li D.J., et al. Tissue engineering and cell-based therapies for fracture sand bone defects // Front Bioeng Biotechnol. 2018. Vol. 6. P. 105. doi: 10.3389/fbioe.2018.00105
  61. Langhans M.T., Yu S., Tuan R.S. Stem cells in skeletal tissue engineering: technologies and models // Curr Stem Cell Res Ther. 2016. Vol. 11, N 6. P. 453–474. doi: 10.2174/1574888x10666151001115248
  62. Kinoshita Y., Maeda H. Recent developments of functional scaffolds for craniomaxillofacial bone tissue engineering applications // ScientificWorldJournal. 2013. Vol. 2113. P. 863157. doi: 10.1155/2013/863157
  63. Трактуев Д.О., Парфенова Е.В., Ткачук В.А., Марч К.Л. Стромальные клетки жировой ткани — пластический тип клеток, обладающих высоким терапевтическим потенциалом // Цитология. 2006. Т. 48, № 2. С. 83–94. EDN: IJNWUH
  64. Zuk P.A., Zhu M., Ashjian P., et al. Human adipose tissue is a source of multipotent stem cells // Mol Biol Cell. 2002. Vol. 13, N 12. P. 4279–4295. doi: 10.1091/mbc.e02-02-0105
  65. Katz A.J., Tholpady A., Tholpady S.S., et al. Cell surface and transcriptional characterization of human adipose-derived adherent stromal cells // Stem Cells. 2005. Vol. 23, N 3. P. 412–423. doi: 10.1634/stemcells.2004-0021
  66. Nakagami H., Morishita R., Maeda K., et al. Adipose tissue-derived stromal cells as a novel option for regenerative cell therapy // J Atheroscler Thromb. 2006. Vol. 13, N 2. P. 77–81. doi: 10.5551/jat.13.77
  67. Dufrane D. Impact of age on human adipose stem cells for bone tissue engineering // Cell Transplant. 2017. Vol. 26, N 9. P. 1496–1504. doi: 10.1177/0963689717721203
  68. Zuk P.A., Zhu M., Mizuno H., et al. Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies // Tissue Eng. 2001. Vol. 7, N 2. P. 211–228. doi: 10.1089/107632701300062859
  69. Jurgens W.J.F.M., Oedayrajsingh-Varma M.J., Helder M.N., et al. Effect of tissue-harvesting site on yield of stem cells derived from adipose tissue: implications for cell-based therapies // Cell Tissue Res. 2008. Vol. 332, N 3. P. 415–426. doi: 10.1007/s00441-007-0555-7
  70. Alexander R.W. Understanding adipose-derived stromal vascular fraction cell biology and use on the basis of cellular, chemical, structural and paracrine components: a concise review // J Prolother. 2012. Vol. 4, N 1. P. e855–e869.
  71. Mizuno H., Tobita M., Uysal A.C. Concise review: adipose-derived stem cells as a novel tool for future regenerative medicine // Stem Cells. 2012. Vol. 30, N 5. P. 804–810. doi: 10.1002/stem.1076
  72. Hirose Y., Funahashi Y., Matsukawa Y., et al. Comparison of trophic factors secreted from human adipose-derived stromal vascular fraction with those from adipose-derived stromal/stem cells in the same individuals // Cytotherapy. 2018. Vol. 20, N 4. P. 589–591. doi: 10.1016/j.jcyt.2018.02.001
  73. Перова М.Д., Козлов В.А., Мельник Е.А., Карпюк В.Б. Новые возможности замещения больших дефектов челюстей при лечении одонтогенных кист с помощью васкулярно-клеточной фракции жировой ткани // Институт стоматологии. 2011. № 1. С. 107–109.
  74. Перова М.Д., Карпюк В.Б., Севостьянов И.А., Гилевич И.В. Результаты устранения регрессионной трансформации альвеолярного гребня челюстей с применением аутогенной стромально-васкулярной фракции жировой ткани // Кубанский научный медицинский вестник. 2019. Т. 26, № 2. С. 71–84. EDN: RHORGR doi: 10.25207/1608-6228-2019-26-2-71-84
  75. Sándor G.K., Numminen J., Wolff J., et al. Adipose stem cells used to reconstruct 13 cases with cranio-maxillofacial hard-tissue defects // Stem Cells Transl Med. 2014. Vol. 3, N 4. P. 530–540. doi: 10.5966/sctm.2013-0173
  76. Manimaran K., Sharma R., Sankaranarayanan S., Perumal S.M. Regeneration of mandibular ameloblastoma defect with the help of autologous dental pulp stem cells and buccal pad of fat stromal vascular fraction // Ann Maxillofac Surg. 2016. Vol. 6, N 1. P. 97–100. doi: 10.4103/2231-0746.186128
  77. Pellacchia V., Renzi G., Becelli R., et al. Bone regeneration of the maxillofacial region through the use of mesenchymal cells obtained by a filtration process of the adipose tissue // J Craniofac Surg. 2016. Vol. 27, N 3. P. 558–560. doi: 10.1097/SCS.0000000000002447
  78. Prins H.J., Schulten E.A., Ten Bruggenkate C.M., et al. Bone regeneration using the freshly isolated autologous stromal vascular fraction of adipose tissue in combination with calcium phosphate ceramics // Stem Cells Transl Med. 2016. Vol. 5, N 10. P. 1362–1374. doi: 10.5966/sctm.2015-0369
  79. Feinberg S.E., Aghaloo T.L., Cunningham L.L. Jr. Role of tissue engineering in oral and maxillofacial reconstruction: findings of the 2005 AAOMS Research Summit // J Oral Maxillofac Surg. 2005. Vol. 63, N 10. P. 1418–1425. doi: 10.1016/j.joms.2005.07.004
  80. Kasai Y., Takagi R., Kobayashi S., et al. A stable protocol for the fabrication of transplantable human oral mucosal epithelial cell sheets for clinical application // 2020. Vol. 14. P. 87–94. doi: 10.1016/j.reth.2019.11.007
  81. Bannasch H., Unterberg T., Föhn M., et al. Cultured keratinocytes in fibrin with decellularised dermis close porcine full-thickness wounds in a single step // 2008. Vol. 34, N 7. P. 1015–1021. doi: 10.1016/j.burns.2007.12.009
  82. Meran S., Thomas D.W., Stephens P., et al. Hyaluronan facilitates transforming growth factor-beta1-mediated fibroblast proliferation // 2008. Vol. 283, N 10. P. 6530–6545. doi: 10.1074/jbc.M704819200
  83. Terada M., Izumi K., Ohnuki H., et al. Construction and characterization of a tissue-engineered oral mucosa equivalent based on a chitosan-fish scale collagen composite // J Biomed Mater Res B Appl Biomater. 2012. Vol. 100, N 7. P. 1792–1802. doi: 10.1002/jbm.b.32746
  84. Sultankulov B., Berillo D., Sultankulova K., et al. Progress in the development of chitosan-based biomaterials for tissue engineering and regenerative medicine // Biomolecules. 2019. Vol. 9, N 9. P. 470. doi: 10.3390/biom9090470
  85. Bustos R.H., Suesca E., Millán D., et al. Real-time quantification of proteins secreted by artificial connective tissue made from uni- or multidirectional collagen I scaffolds and oral mucosa fibroblasts // Anal Chem. 2014. Vol. 86, N 5. P. 2421–2428. doi: 10.1021/ac4033164
  86. Jansen R.G., van Kuppevelt T.H., Daamen W.F., et al. Tissue reactions to collagen scaffolds in the oral mucosa and skin of rats: environmental and mechanical factors // Arch Oral Biol. 2008. Vol. 53, N 4. P. 376–387. doi: 10.1016/j.archoralbio.2007.11.003
  87. Rouabhia M., Allaire P. Gingival mucosa regeneration in athymic mice using in vitro engineered human oral mucosa // Biomaterials. 2010. Vol. 31, N 22. P. 5798–5804. doi: 10.1016/j.biomaterials.2010.04.004
  88. Izumi K., Terashi H., Marchelo C.L., Feinberg S.E. Development and characterization of a tissue-engineered human oral mucosa equivalent produced in a serum-free culture system // J Dent Res. 2000. Vol. 79, N 3. P. 798–805. doi: 10.1177/00220345000790030301
  89. Xiong X., Zhao Y., Zhang W., et al. In vitro engineering of a palatal mucosa equivalent with acellular porcine dermal matrix // J Biomed Mater Res A. 2008. Vol. 86, N 2. P. 544–551. doi: 10.1002/jbm.a.31689
  90. Barker T.S., Cueva M.A., Rivera-Hidalgo F., et al. A comparative study of root coverage using two different acellular dermal matrix products // J Periodontol. 2010. Vol. 81, N 11. P. 1596–1603. doi: 10.1902/jop.2010.090291
  91. Gallagher S.I., Matthews D.C. Acellular dermal matrix and subepithelial connective tissue grafts for root coverage: a systematic review // J Indian Soc Periodontol. 2017. Vol. 21, N 6. P. 439–448. doi: 10.4103/jisp.jisp_222_17
  92. Dongari-Bagtzoglou A., Kashleva H. Development of a highly reproducible three-dimensional organotypic model of the oral mucosa // Nat Protoc. 2006. Vol. 1, N 4. P. 2012–2018. doi: 10.1038/nprot.2006.323
  93. Moharamzadeh K., Colley H., Murdoch C., et al. Tissue-engineered oral mucosa // J Dent Res. 2012. Vol. 91, N 7. P. 642–650. doi: 10.1177/0022034511435702
  94. Stevens M.M., George J.H. Exploring and engineering the cell surface interface // Science. 2005. Vol. 310, N 5751. P. 1135–1138. doi: 10.1126/science.1106587
  95. Matsusaki M., Sakaue K., Kadowaki K., Akashi M. Three-dimensional human tissue chips fabricated by rapid and automatic inkjet cell printing // Adv Healthc Mater. 2013. Vol. 2, N 4. P. 534–539. doi: 10.1002/adhm.201200299
  96. Gao G., Cui X. Three-dimensional bioprinting in tissue engineering and regenerative medicine // Biotechnol Lett. 2016. Vol. 38, N 2. P. 203–211. doi: 10.1007/s10529-015-1975-1
  97. Liu J., Lamme E.N., Steegers-Theunissen R.P., et al. Cleft palate cells can regenerate a palatal mucosa in vitro // J Dent Res. 2008. Vol. 87, N 8. P. 788–792. doi: 10.1177/154405910808700806
  98. Clark J.M., Saffold S.H., Israel J.M. Decellularized dermal grafting in cleft palate repair // Arch Facial Plast Surg. 2003. Vol. 5, N 1. P. 40–45. doi: 10.1001/archfaci.5.1.40
  99. Tra W.M., van Neck J.W., Hovius S.E., et al. Characterization of a three-dimensional mucosal equivalent: similarities and differences with native oral mucosa // Cells Tissues Organs. 2012. Vol. 195, N 3. P. 185–196. doi: 10.1159/000324918
  100. Buskermolen J.K., Reijnders C.M., Spiekstra S.W., et al. Development of a full-thickness human gingiva equivalent constructed from immortalized keratinocytes and fibroblasts // Tissue Eng Part C Methods. 2016. Vol. 22, N 8. P. 781–791. doi: 10.1089/ten.TEC.2016.0066
  101. Asano Y., Shimoda H., Okano D., et al. Transplantation of three-dimensional artificial human vascular tissues fabricated using an extracellular matrix nanofilm-based cell-accumulation technique // J Tissue Eng Regen Med. 2017. Vol. 11, N 4. P. 1303–1307. doi: 10.1002/term.2108
  102. Sasaki K., Akagi T., Asaoka T., et al. Construction of three-dimensional vascularized functional human liver tissue using a layer-by-layer cell coating technique // Biomaterials. 2017. Vol. 133. P. 263–274. doi: 10.1016/j.biomaterials.2017.02.034
  103. Nishiyama K., Akagi T., Iwai S., Akashi M. Construction of vascularized oral mucosa equivalents using a layer-by-layer cell coating technology // Tissue Eng Part C Methods. 2019. Vol. 25, N 5. P. 262–275. doi: 10.1089/ten.TEC.2018.0337

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Эко-Вектор, 2024


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 86295 от 11.12.2023 г. 
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ЭЛ № ФС 77 - 80635 от 15.03.2021 г.