Роль митохондриальной дисфункции в патогенезе и лечении воспалительных заболеваний полости рта
- Авторы: Абдуллаева А.И.1, Олесова В.Н.1, Акопов Д.Ю.1, Олесов Е.Е.1, Абдуллаев С.А.1
-
Учреждения:
- Государственный научный центр Российской Федерации — Федеральный медицинский биофизический центр имени А.И. Бурназяна
- Выпуск: Том 28, № 6 (2024)
- Страницы: 612-623
- Раздел: Обзоры
- Статья получена: 28.05.2024
- Статья одобрена: 27.09.2024
- Статья опубликована: 22.12.2024
- URL: https://rjdentistry.com/1728-2802/article/view/632944
- DOI: https://doi.org/10.17816/dent632944
- ID: 632944
Цитировать
Аннотация
Воспалительные заболевания полости рта (ВЗПР) включают в себя множество распространённых заболеваний, таких как пародонтит и пульпит. Основными причинами возникновения ВЗПР являются микроорганизмы, травмы, окклюзионные факторы, аутоиммунные заболевания и лучевая терапия. При неправильном лечении такие заболевания могут не только влиять на здоровье полости рта, но также представлять угрозу для общего состояния здоровья. Поэтому выявление ВЗПР на ранней стадии и изучение новых терапевтических стратегий являются важными задачами исследований, связанных с пероральной терапией.
Митохондрии являются важнейшими органеллами для многих клеточных процессов. Нарушения их функций влияют не только на клеточный метаболизм, но косвенно — на здоровье и продолжительность жизни. Митохондриальная дисфункция вовлечена во многие распространённые полигенные заболевания, включая сердечно-сосудистые и нейродегенеративные. В последнее время появляется всё больше данных, свидетельствующих о том, что митохондриальная дисфункция играет решающую роль в развитии и прогрессировании ВЗПР и связанных с ними системных заболеваний.
В данном обзоре излагаются критические идеи о митохондриальной дисфункции и её роли в воспалительных реакциях при ВЗПР.
Полный текст

Об авторах
Альбина Исуповна Абдуллаева
Государственный научный центр Российской Федерации — Федеральный медицинский биофизический центр имени А.И. Бурназяна
Автор, ответственный за переписку.
Email: albi.95@mail.ru
ORCID iD: 0009-0002-0538-7454
SPIN-код: 4355-9186
Россия, 123098, Москва, ул. Живописная, д. 46
Валентина Николаевна Олесова
Государственный научный центр Российской Федерации — Федеральный медицинский биофизический центр имени А.И. Бурназяна
Email: olesova@implantat.ru
ORCID iD: 0000-0002-3461-9317
SPIN-код: 6851-5618
д-р мед. наук, профессор
Россия, 123098, Москва, ул. Живописная, д. 46Давид Юрьевич Акопов
Государственный научный центр Российской Федерации — Федеральный медицинский биофизический центр имени А.И. Бурназяна
Email: akopov.85@bk.ru
ORCID iD: 0009-0000-0603-9406
Россия, 123098, Москва, ул. Живописная, д. 46
Егор Евгеньевич Олесов
Государственный научный центр Российской Федерации — Федеральный медицинский биофизический центр имени А.И. Бурназяна
Email: olesov_georgiy@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-9165-2554
SPIN-код: 8924-3520
д-р мед. наук, профессор
Россия, 123098, Москва, ул. Живописная, д. 46Серажутдин Абдуллаевич Абдуллаев
Государственный научный центр Российской Федерации — Федеральный медицинский биофизический центр имени А.И. Бурназяна
Email: saabdullaev@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-1396-0743
SPIN-код: 3485-8990
д-р биол. наук
Россия, 123098, Москва, ул. Живописная, д. 46Список литературы
- Li X., Liu X.C., Ding X., et al. Resveratrol protects renal damages induced by periodontitis via preventing mitochondrial dysfunction in rats // Oral Dis. 2023. Vol. 29, N. 4. P. 1812–1825. doi: 10.1111/odi.14148
- Abate M., Festa A., Falco M., et al. Mitochondria as playmakers of apoptosis, autophagy and senescence // Semin Cell Dev Biol. 2020. Vol. 98. P. 139–153. doi: 10.1016/j.semcdb.2019.05.022
- Sangwung P., Petersen K.F., Shulman G.I., Knowles J.W. Mitochondrial dysfunction, insulin resistance, and potential genetic implications // Endocrinology. 2020. Vol. 161, N. 4. P. bqaa017. doi: 10.1210/endocr/bqaa017
- Gong W., Wang F., He Y., et al. Mesenchymal stem cell therapy for oral inflammatory diseases: research progress and future perspectives // Curr Stem Cell Res Ther. 2021. Vol. 16, N. 2. P. 165–174. doi: 10.2174/1574888X15666200726224132
- Vujovic S., Desnica J., Stevanovic M., et al. Oral health and oral health-related quality of life in patients with primary sjögren’s syndrome // Medicina (Kaunas). 2023. Vol. 59, N. 3. P. 473. doi: 10.3390/medicina59030473
- Jiang W., Wang Y., Cao Z., et al. The role of mitochondrial dysfunction in periodontitis: From mechanisms to therapeutic strategy // J Periodontal Res. 2023. Vol. 58, N. 5. P. 853–863. doi: 10.1111/jre.13152
- Seo B.J., Yoon S.H., Do J.T. Mitochondrial dynamics in stem cells and differentiation // Int J Mol Sci. 2018. Vol. 19. N. 12. P. 3893. doi: 10.3390/ijms19123893
- Chen X., Zhang Z., Li H., et al. Endogenous ethanol produced by intestinal bacteria induces mitochondrial dysfunction in non-alcoholic fatty liver disease // J Gastroenterol Hepatol. 2020. Vol. 35, N. 11. P. 2009–2019. doi: 10.1111/jgh.15027
- Forbes J.M., Thorburn D.R. Mitochondrial dysfunction in diabetic kidney disease // Nat Rev Nephrol. 2018. Vol. 14, N. 5. P. 291–312. doi: 10.1038/nrneph.2018.9
- Bhatti J.S., Bhatti G.K., Reddy P.H. Mitochondrial dysfunction and oxidative stress in metabolic disorders — A step towards mitochondria based therapeutic strategies // Biochim Biophys Acta Mol Basis Dis. 2017. Vol. 1863, N. 5. P. 1066–1077. doi: 10.1016/j.bbadis.2016.11.010
- West A.P. Mitochondrial dysfunction as a trigger of innate immune responses and inflammation // Toxicology. 2017. Vol. 391. P. 54–63. doi: 10.1016/j.tox.2017.07.016
- Dela Cruz C.S., Kang M.J. Mitochondrial dysfunction and damage associated molecular patterns (DAMPs) in chronic inflammatory diseases // Mitochondrion. 2018. Vol. 41. P. 37–44. doi: 10.1016/j.mito.2017.12.001
- Wang L.W., Shen H., Nobre L., et al. Epstein-Barr-virus-induced one-carbon metabolism drives B cell transformation // Cell Metab. 2019. Vol. 30, N. 3. P. 539–555. doi: 10.1016/j.cmet.2019.06.003
- Xu L., Yan X., Zhao Y., et al. Macrophage polarization mediated by mitochondrial dysfunction induces adipose tissue inflammation in obesity // Int J Mol Sci. 2022. Vol. 23, N. 16. P. 9252. doi: 10.3390/ijms23169252
- Demmer R.T., Papapanou P.N. Epidemiologic patterns of chronic and aggressive periodontitis // Periodontol 2000. 2010. Vol. 53. P. 28–44. doi: 10.1111/j.1600-0757.2009.00326.x
- Papapanou P.N., Sanz M., Buduneli N., et al. Periodontitis: consensus report of workgroup 2 of the 2017 world workshop on the classification of periodontal and peri-implant diseases and conditions // J Periodontol. 2018. Vol. 89, Suppl. 1. P. S173–S182. doi: 10.1002/JPER.17-0721
- Laine M.L., Crielaard W., Loos B.G. Genetic susceptibility to periodontitis // Periodontol 2000. 2012. Vol. 58, N. 1. P. 37–68. doi: 10.1111/j.1600-0757.2011.00415.x
- Graziani F., Karapetsa D., Alonso B., Herrera D. Nonsurgical and surgical treatment of periodontitis: how many options for one disease? // Periodontol 2000. 2017. Vol. 75, N. 1. P. 152–188. doi: 10.1111/prd.12201
- Li L., Zhang Y.L., Liu X.Y., et al. Periodontitis exacerbates and promotes the progression of chronic kidney disease through oral flora, cytokines, and oxidative stress // Front Microbiol. 2021. Vol. 12. P. 656372. doi: 10.3389/fmicb.2021.656372
- Govindaraj P., Khan N.A., Gopalakrishna P., et al. Mitochondrial dysfunction and genetic heterogeneity in chronic periodontitis // Mitochondrion. 2011. Vol. 11, N. 3. P. 504–512. doi: 10.1016/j.mito.2011.01.009
- Tomokiyo A., Wada N., Maeda H. Periodontal ligament stem cells: regenerative potency in periodontium // Stem Cells Dev. 2019. Vol. 28, N. 15. P. 974–985. doi: 10.1089/scd.2019.0031
- Zhang Z., Deng M., Hao M., Tang J. Periodontal ligament stem cells in the periodontitis niche: inseparable interactions and mechanisms // J Leukoc Biol. 2021. Vol. 110, N. 3. P. 565–576. doi: 10.1002/JLB.4MR0421-750R
- Li J., Wang Z., Huang X., et al. Dynamic proteomic profiling of human periodontal ligament stem cells during osteogenic differentiation // Stem Cell Res Ther. 2021. Vol. 12, N. 1. P. 98. doi: 10.1186/s13287-020-02123-6
- Chen Y., Ji Y., Jin X., et al. Mitochondrial abnormalities are involved in periodontal ligament fibroblast apoptosis induced by oxidative stress // Biochem Biophys Res Commun. 2019. Vol. 509, N. 2. P. 483–490. doi: 10.1016/j.bbrc.2018.12.143
- Liu J., Zeng J., Wang X., et al. P53 mediates lipopolysaccharide-induced inflammation in human gingival fibroblasts // J Periodontol. 2018. Vol. 89, N. 9. P. 1142–1151. doi: 10.1002/JPER.18-0026
- Liu J., Wang X., Xue F., et al. Abnormal mitochondrial structure and function are retained in gingival tissues and human gingival fibroblasts from patients with chronic periodontitis // J Periodontal Res. 2022. Vol. 57, N. 1. P. 94–103. doi: 10.1111/jre.12941
- Liu J., Wang X., Zheng M., Luan Q. Oxidative stress in human gingival fibroblasts from periodontitis versus healthy counterparts // Oral Dis. 2023. Vol. 29, N. 3. P. 1214–1225. doi: 10.1111/odi.14103
- França L.F.C., Vasconcelos A.C.C.G., da Silva F.R.P., et al. Periodontitis changes renal structures by oxidative stress and lipid peroxidation // J Clin Periodontol. 2017. Vol. 44, N. 6. P. 568–576. doi: 10.1111/jcpe.12729
- Kose O., Kurt Bayrakdar S., Unver B., et al. Melatonin improves periodontitis-induced kidney damage by decreasing inflammatory stress and apoptosis in rats // J Periodontol. 2021. Vol. 92, N. 6. P. 22–34. doi: 10.1002/JPER.20-0434
- Sun X., Mao Y., Dai P., et al. Mitochondrial dysfunction is involved in the aggravation of periodontitis by diabetes // J Clin Periodontol. 2017. Vol. 44, N. 5. P. 463–471. doi: 10.1111/jcpe.12711
- Liu Q., Guo S., Huang Y., et al. Inhibition of trpa1 ameliorates periodontitis by reducing periodontal ligament cell oxidative stress and apoptosis via perk/eif2α/atf-4/chop signal pathway // Oxid Med Cell Longev. 2022. Vol. 2022. P. 4107915. doi: 10.1155/2022/4107915
- Gölz L., Memmert S., Rath-Deschner B. Hypoxia and p. gingivalis synergistically induce hif-1 and nf-κb activation in pdl cells and periodontal diseases // Mediators Inflamm. Vol. 2015. P. 438085. doi: 10.1155/2015/438085
- Zhao J., Faure L., Adameyko I., Sharpe P.T. Stem cell contributions to cementoblast differentiation in healthy periodontal ligament and periodontitis // Stem Cells. 2021. Vol. 39, N. 1. P. 92–102. doi: 10.1002/stem.3288
- Wang H., Wang X., Ma L., et al. PGC-1 alpha regulates mitochondrial biogenesis to ameliorate hypoxia-inhibited cementoblast mineralization // Ann N Y Acad Sci. 2022. Vol. 1516, N. 1. P. 300–311. doi: 10.1111/nyas.14872
- Zhao B., Zhang W., Xiong Y., et al. Effects of rutin on the oxidative stress, proliferation and osteogenic differentiation of periodontal ligament stem cells in LPS-induced inflammatory environment and the underlying mechanism // J Mol Histol. 2020. Vol. 51, N. 2. P. 161–171. doi: 10.1007/s10735-020-09866-9
- Iova G.M., Calniceanu H., Popa A., et al. The antioxidant effect of curcumin and rutin on oxidative stress biomarkers in experimentally induced periodontitis in hyperglycemic wistar rats // Molecules. 2021. Vol. 26, N. 5. P. 1332. doi: 10.3390/molecules26051332
- Cai W.J., Chen Y., Shi L.X., et al. Akt-gsk3β signaling pathway regulates mitochondrial dysfunction-associated OPA١ cleavage contributing to osteoblast apoptosis: preventative effects of hydroxytyrosol // Oxid Med Cell Longev. 2019. Vol. 2019. P. 4101738. doi: 10.1155/2019/4101738
- Zhang X., Jiang Y., Mao J., et al. Hydroxytyrosol prevents periodontitis-induced bone loss by regulating mitochondrial function and mitogen-activated protein kinase signaling of bone cells // Free Radic Biol Med. 2021. Vol. 176. P. 298–311. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2021.09.027
- Jiang C., Yang W., Wang C., et al. Methylene blue-mediated photodynamic therapy induces macrophage apoptosis via ros and reduces bone resorption in periodontitis // Oxid Med Cell Longev. 2019. Vol. 2019. P. 1529520. doi: 10.1155/2019/1529520
- Sui L., Wang J., Xiao Z., et al. ROS-scavenging nanomaterials to treat periodontitis // Front Chem. 2020. Vol. 8. P. 595530. doi: 10.3389/fchem.2020.595530
- Li X., Zhao Y., Peng H., et al. Robust intervention for oxidative stress-induced injury in periodontitis via controllably released nanoparticles that regulate the ROS-PINK1-Parkin pathway // Front Bioeng Biotechnol. 2022. Vol. 10. P. 1081977. doi: 10.3389/fbioe.2022.1081977
- Qiu X., Yu Y., Liu H., et al. Remodeling the periodontitis microenvironment for osteogenesis by using a reactive oxygen species-cleavable nanoplatform // Acta Biomater. 2021. Vol. 135. P. 593–605. doi: 10.1016/j.actbio.2021.08.009
- Zhai Q., Chen X., Fei D., et al. Nanorepairers rescue inflammation-induced mitochondrial dysfunction in mesenchymal stem cells // Adv Sci (Weinh). 2022. Vol. 9, N. 4. P. e2103839. doi: 10.1002/advs.202103839
- Nessa N., Kobara M., Toba H., et al. Febuxostat attenuates the progression of periodontitis in rats // Pharmacology. 2021. Vol. 106, N. 5-6. P. 294–304. doi: 10.1159/000513034
- Vaseenon S., Weekate K., Srisuwan T., et al. Observation of inflammation, oxidative stress, mitochondrial dynamics, and apoptosis in dental pulp following a diagnosis of irreversible pulpitis // Eur Endod J. 2023. Vol. 8, N. 2. P. 148–155. doi: 10.14744/eej.2022.74745
- Dogan Buzoglu H., Ozcan M., Bozdemir O., et al. Evaluation of oxidative stress cycle in healthy and inflamed dental pulp tissue: a laboratory investigation // Clin Oral Investig. 2023. Vol. 27, N. 10. P. 5913–5923. doi: 10.1007/s00784-023-05203-y
- Vengerfeldt V., Mändar R., Saag M., et al. Oxidative stress in patients with endodontic pathologies // J Pain Res. 2017. Vol. 10. P. 2031–2040. doi: 10.2147/JPR.S141366
- Pan H., Cheng L., Yang H., et al. Lysophosphatidic acid rescues human dental pulp cells from ischemia-induced apoptosis // J Endod. 2014. Vol. 40, N. 2. P. 217–222. doi: 10.1016/j.joen.2013.07.015
- Guo X., Chen J. The protective effects of saxagliptin against lipopolysaccharide (LPS)-induced inflammation and damage in human dental pulp cells // Artif Cells Nanomed Biotechnol. 2019. Vol. 47, N. 1. P. 1288–1294. doi: 10.1080/21691401.2019.1596925
- Zhang X., Wang C., Zhou Z., Zhang Q. The mitochondrial-endoplasmic reticulum co-transfer in dental pulp stromal cell promotes pulp injury repair // Cell Prolif. 2024. Vol. 57, N. 1. P. e13530. doi: 10.1111/cpr.13530
- Zhang Y.F., Zhou L., Mao H.Q., et al. Mitochondrial DNA leakage exacerbates odontoblast inflammation through gasdermin D-mediated pyroptosis // Cell Death Discov. 2021. Vol. 7, N. 1. P. 381. doi: 10.1038/s41420-021-00770-z
- Wang K., Zhou L., Mao H., et al. Intercellular mitochondrial transfer alleviates pyroptosis in dental pulp damage // Cell Prolif. 2023. Vol. 56, N. 9. P. e13442. doi: 10.1111/cpr.13442
- Mendenhall W.M., Suárez C., Genden E.M., et al. Parameters associated with mandibular osteoradionecrosis // Am J Clin Oncol. 2018. Vol. 41, N. 12. P. 1276–1280. doi: 10.1097/COC.0000000000000424
- Shuster A., Reiser V., Trejo L., et al. Comparison of the histopathological characteristics of osteomyelitis, medication-related osteonecrosis of the jaw, and osteoradionecrosis // Int J Oral Maxillofac Surg. 2019. Vol. 48, N. 1. P. 17–22. doi: 10.1016/j.ijom.2018.07.002
- Danielsson D., Brehwens K., Halle M., et al. Influence of genetic background and oxidative stress response on risk of mandibular osteoradionecrosis after radiotherapy of head and neck cancer // Head Neck. 2016. Vol. 38, N. 3. P. 387–393. doi: 10.1002/hed.23903
- Xu J., Zheng Z., Fang D., et al. Mesenchymal stromal cell-based treatment of jaw osteoradionecrosis in Swine // Cell Transplant. 2012. Vol. 21, N. 8. P. 1679–1686. doi: 10.3727/096368911X637434
- Wang C., Blough E., Dai X., et al. Protective effects of cerium oxide nanoparticles on mc3t3-e1 osteoblastic cells exposed to x-ray irradiation // Cell Physiol Biochem. 2016. Vol. 38, N. 4. P. 1510–1519. doi: 10.1159/000443092
- Li J., Yin P., Chen X., et al. Effect of α٢-macroglobulin in the early stage of jaw osteoradionecrosis // Int J Oncol. 2020. Vol. 57, N. 1. P. 213–222. doi: 10.3892/ijo.2020.5051
Дополнительные файлы
