Сравнительный анализ данных комплексных исследований микрофлоры полости рта больных пародонтитом разной степени тяжести

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Обоснование. Полость рта является благоприятной средой для размножения и биологической активности большинства микроорганизмов. При этом наблюдаются как их положительное симбиотическое взаимодействие, так и отрицательное влияние на мягкие ткани пародонтального комплекса, включая представителей нормальной микрофлоры.

Цель. Определить этиопатогенетическую роль основных обитателей ротовой полости и частоту их встречаемости среди больных пародонтитом и здоровых лиц контрольной группы.

Методы. Авторами статьи проведён сравнительный анализ частоты встречаемости различных бактериальных патогенов в полости рта у больных пародонтитом разной степени тяжести и здоровых лиц контрольной группы, а также определена их роль в этиологии заболеваний пародонтального комплекса.

Результаты. При изучении состава микрофлоры слизистой оболочки ротовой полости и дёсен классическими и современными методами у обследованных лиц с различными воспалительными заболеваниями пародонта заметно чаще обнаруживаются изменения микрофлоры пародонтального комплекса с увеличением количества как периодонтопатогенных возбудителей, так и патогенной кокковой флоры.

Заключение. Cочетание микроорганизмов «красного комплекса» в комбинации одновременно с Streptococcus pyogenes и Staphylococcus aureus способствует формированию биоплёнок и более высокому риску разрушения экзополимерного матрикса, что соответствует клиническим проявлениям пародонтита различной степени тяжести.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Нодира Тухтаходжаевна Нурматова

Центр развития профессиональной квалификации медицинских работников

Email: nurmatovanodira@gmail.com
ORCID iD: 0009-0000-5853-4062
Узбекистан, 100011, Ташкент, ул. Паркент, д. 51а

Суннатулло Амруллоевич Гаффоров

Центр развития профессиональной квалификации медицинских работников

Автор, ответственный за переписку.
Email: sunnatullogafforov@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-2816-3162
SPIN-код: 9176-2861

д-р мед. наук, профессор

Узбекистан, 100011, Ташкент, ул. Паркент, д. 51а

Наргиза Абитовна Шадманова

Центр переподготовки кадров и повышения квалификации в сфере санитарно-эпидемиологического благополучия и общественного здоровья

Email: shadmanova06@yahoo.com
ORCID iD: 0009-0005-2610-4021
Ташкент

Жавохирмирзо Дилмуроджонович Одилжонов

Центр развития профессиональной квалификации медицинских работников

Email: black_prince1112@mail.ru
ORCID iD: 0009-0005-4575-2884
Узбекистан, 100011, Ташкент, ул. Паркент, д. 51а

Список литературы

  1. Niazy AA. LuxS quorum sensing system and biofilm formation of oral microflora: A short review article. Saudi Dent J. 2021;33(3):116–123. doi: 10.1016/j.sdentj.2020.12.007 EDN: XWGRNP
  2. Carroll KC, Pfaller MA, editors. Manual of Clinical Microbiology (12th edition). Washington: ASM Press; 2019.
  3. Cleatus B, Thirunavukkarasu R, Kumaran S, John J. Oral microbiome and human health. Chapter 8. In: Human and animal microbiome engineering. 2025. P. 139–156. doi: 10.1016/B978-0-443-22348-8.00008-8
  4. De Vos P, George M. Garrity, Dorothy Jones,et al. editors. Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology. Volume 3: The Firmicutes. Springer; 2009.
  5. Liu H, Tang Y, Zhang S, et al. Anti-infection mechanism of a novel dental implant made of titanium-copper (TiCu) alloy and its mechanism associated with oral microbiology. Bioact Mater. 2021;8:381–395. doi: 10.1016/j.bioactmat.2021.05.053 EDN: JHDAIM
  6. Idiev G’E. Oral cavity hygiene in non-ferrous metal workers in Russia and Uzbekistan. In: Proceedings of the EPMA World Congress. Pilsen, 2019 Sept 19–22. Available from: https://www.epmanet.eu/latest/events/2019/epma-world-congress-2019
  7. Trtić N, Mori M, Matsui S, et al. Oral commensal bacterial flora is responsible for peripheral differentiation of neutrophils in the oral mucosa in the steady state. J Oral Biosci. 2023;65(1):119–125. doi: 10.1016/j.job.2022.11.002 EDN: WRTYOJ
  8. Garcia LS, editor. Clinical Microbiology Procedures Handbook (4th edition). Washington: ASM Press; 2016.
  9. Guhanraj R, Dhanasekaran D. Functions and molecular interactions of the symbiotic microbiome in oral cavity of humans. Chapter 48. In: Microbial symbionts. 2023. P. 861–883. doi: 10.1016/B978-0-323-99334-0.00013-X
  10. Souza PRM, Dupont L, Mosena G, et al. Variations of oral anatomy and common oral lesions. An Bras Dermatol. 2024;99(1):3–18. doi: 10.1016/j.abd.2023.06.001 EDN: OBGVAP
  11. Abdullayev ShR, Gafforov SA. Clinical and functional state of tissues and organs of the oral cavity in patients with chronic kidney diseases working in the oil refining industry. Eurasian Bulletin of Pediatrics. 2020;(2):67–73.
  12. Ellepola ANB, Khan ZU. Impact of brief exposure to lysozyme and lactoferrin on pathogenic attributes of oral Candida. Int Dent J. 2024;74(5):1161–1167. doi: 10.1016/j.identj.2024.04.003 EDN: RDQXIE
  13. Gafforov SA, Pulatova RS. About the state of oral cavity tissues of patients with specific immunodeficiency conditions of the body. International Journal of Health Systems and Medical Sciences. 2023;2(5):242–247. Available from: https://inter-publishing.com/index.php/IJHSMS/article/view/1794
  14. Paudel D, Uehara O, Giri S, et al. Effect of psychological stress on the oral-gut microbiota and the potential oral-gut-brain axis. Jpn Dent Sci Rev. 2022;58:365–375. doi: 10.1016/j.jdsr.2022.11.003 EDN: UMJAOC
  15. Yamazaki K. Oral-gut axis as a novel biological mechanism linking periodontal disease and systemic diseases: A review. Jpn Dent Sci Rev. 2023;59:273–280. doi: 10.1016/j.jdsr.2023.08.003 EDN: LPWJVZ
  16. Fischer LA, Bittner-Eddy PD, Costalonga M. Major histocompatibility complex II expression on oral langerhans cells differentially regulates mucosal CD4 and CD8 T cells. J Invest Dermatol. 2024;144(3):573–584.e1. doi: 10.1016/j.jid.2023.09.277 EDN: ZGZESY
  17. Prabhu VR, Bhavana K, Nimish PD, et al. Metagenomics: Implications in oral health and disease. Chapter 11. In: Metagenomics: Perspectives, Methods, and Applications. 2nd edition. 2025. P. 265–287. doi: 10.1016/B978-0-323-91631-8.00020-2
  18. Scannapieco FA. Poor oral health in the etiology and prevention of aspiration pneumonia. Clin Geriatr Med. 2023;39(2):257–271. doi: 10.1016/j.cger.2023.01.010 EDN: HCDBBP
  19. Mu R, Chen J. Oral bio-interfaces: properties and functional roles of salivary multilayer in food oral processing. Trends in Food Science & Technology. 2023;132:121–131. doi: 10.1016/j.tifs.2023.01.003 EDN: UCJNGP
  20. Srinivasan M, Thyvalikakath T. Oral cavity and COVID-19: clinical manifestations, pathology, and dental profession. Chapter 8. In: Textbook of SARS-CoV-2 and COVID-19: epidemiology, etiopathogenesis, immunology, clinical manifestations, treatment, complications, and preventive measures. 2024. P. 173–190. doi: 10.1016/B978-0-323-87539-4.00008-7
  21. Nazarov UK, Gafforov SA, Gafforova SS. The state of functional and structural organs of oral cavity in people employed in mining and metallurgical plants. In: Proceeding of The ICECRS. Vol. 6. 2020.
  22. Sobirov A, Shamsiyeva M, Gafforov S. Basing the formation of pathologies of the oral cavity in children and adolescents with cerebral palsy with the help of clinical and laboratory studies. Sciences of Europe. 2024;144:40–45. doi: 10.5281/zenodo.12739930 EDN: EPTELK
  23. Gupta V, Tripathy BC, Gupta N, Prakash J. Significance of the normal microflora of the body. Chapter 2. In: Microbial crosstalk with immune system new insights in therapeutics. 2022. P. 21–38. doi: 10.1016/B978-0-323-96128-8.00008-0

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Гендерное распределение больных с гнойно-воспалительными заболеваниями пародонтального комплекса (1-я группа) и здоровых лиц (2-я группа), %.

Скачать (632KB)
3. Рис. 2. Частота выявления основных представителей семейств Streptococccaceae и Staphylococcaceae у обследованных групп, %. КПС — коагулазоположительные стафилококки, КОС — коагулазоотрицательные стафилококки, VGS — viridans group streptococci (α-гемолитические стрептококки).

Скачать (576KB)
4. Рис. 3. Классический метод идентификации основных представителей семейства Streptococcaceae и Staphylococcaceae: a — рост S. аureus на желточно-солевом агаре, b — рост S. аureus на ДНКазном агаре (DNAse Test Agar), c — рост S. аureus на кровяном агаре

5. Рис. 4. Классический метод идентификации основных представителей рода Streptococcus от Streptococcus pyogenes. Окраска по методу Грама, микроскопия представителей рода Streptococcus; а, b — потенциальные представители рода Streptococcus, c — грамположительные кокки

6. Рис. 5. Идентификация выделенных изолятов с помощью MALDI-TOF масс-спектрометрии

7. Рис. 6. Классический метод культивирования облигатных анаэробных микроорганизмов слизистой оболочки пародонтального комплекса с использованием анаэробных культиваторов (анаэростатов) с системами создания бескислородной атмосферы (GasPak)

8. Рис. 7. Сравнительная оценка аэробных/факультативно-анаэробных изолятов в различных группах, %. КПС — коагулазоположительные стафилококки

9. Рис. 8. Сравнительная оценка частоты встречаемости патогенных микроорганизмов у участников двух групп, обследованных с помощью метода полимеразной цепной реакции, %

Скачать (711KB)

© Эко-Вектор, 2025



СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 86295 от 11.12.2023 г
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ЭЛ № ФС 77 - 80635 от 15.03.2021 г
.