COMPARATIVE RESULTS OF ANTIBACTERIAL PROCESSING OF THE ROOT CHANNELS UNDER THE STANDARD PROTOCOL WITH USE OF HYPOCHLORITE OF SODIUM (NAOCL) AND THE LASER ER, CR: YSGG WAVE LENGTH 2780 НМ

Full Text

Введение. Проблема качественной очистки корневых каналов зубов является одной из актуальных проблем в стоматологии, так как от этого зависят результаты лечения осложнённого кариеса и как следствие - сохранность зубов. На сегодняшний день препарирование корневых каналов роторными никель-титановыми инструментами является золотым стандартом в эндодонтии. Ме ханическое препарирование апикальной части корневого канала до 25-30-го размера по ISO позволяет очистить от 20 % до 60 % каналов [1]. В сочетании с механическим препарированием применяется и медикаментозная обработка каналов - для улучшения режущих свойств инструментов, для удаления дентинной стружки и смазанного слоя дентина, растворения органического вещества, очищения недоступных участков и устранения микроорганизмов. С этой целью чаще всего в эндодонтии используют гипохлорит натрия (потенциальный антибактериальный эффект, растворение некротизированной ткани) и раствор ЭДТА (для удаления смазанного слоя). Для активации ирригантов используют различные техники - ручную, звуковую (Эндоактиватор), ультразвуковую, гидродинамическую (Эндовак) [2, 3]. Тем не менее процент осложнений эндодонтического лечения остается довольно высоким - традиционное эндодонтическое лечение зубов с апикальным периодонтитом заканчивается удалением в 15-20 % случаев. Причиной этого является наличие остаточных бактерий или неадекватная герметизация корневых каналов. Оставшиеся бактерии в эндодонтически леченных зубах способствуют продолжению инфекционного процесса в периапикальных тканях [4-6]. Сложное морфологическое строение корневой системы и устойчивость бактерий (биоплёнки) наводит исследователей на поиск новых эффективных средств и методов дезинфекции. Относительно новым и безопасным является использование лазеров для эндодонтического лечения. Так с 90-х годов прошлого века лазеры нашли применение в стоматологии, в частности в эндодонтии для повышения эффективности обеззараживания системы корневых каналов. В эндодонтии используется в основном три типа лазеров - это СО2, диодный и эрбиевый. Самым перспективным является эрбиевый, так как в отличие от СО2, он лучше поглощается молекулами воды и гидроксиапатита, а следовательно более эффективен. При применении диодного лазера существует опасность перегрева апикальных тканей, и поэтому его особенно опасно использовать в широких каналах и каналах с апикальной резорбцией [7, 8]. Цель нашего исследования - оценка антибактериальной эффективности методов обработки корневого канала по традиционному протоколу, где основным ирригантом является 3 % раствор гипохлорита натрия и 17 % раствор ЭДТА, и обработки корневого канала лазером Er, Cr: YSGG длиной волны 2780 нм. Материал и методы Для эксперимента использовали лазер Er,Cr:YSGG с длиной волны 2780 нм (Waterlase iPlus, Вю1аБе,США) и радиальную эндодонтическую насадку RFT2 (диаметром 200 мк, длиной 25 мм). Исследование проводили на 20 человеческих зубах (резцах), удалённых по поводу осложнений кариеса. Материалом исследования служило содержимое корневых каналов до и после обработки. Во всех зубах выполняли препаровку кариозной полости бором, раскрытие полости зуба и забор содержимого корневых каналов - стерильным пульпэкстрактором для контроля. Затем пульпэкстрак-тор переносили в пробирку с транспортной средой Эймса с углем. Для механической подготовки всех зубов использовали ручные файлы и машинные никельтитановые файлы ProTaper Universal (DentsplySirona Endodontics), корневые каналы обрабатывали минимум до размера ISO 30.06. Все зубы разделили на 4 группы. 1-я группа (5 зубов) - в каждом зубе проводили медикаментозную обработку канала по традиционному протоколу с применением в качестве ирриганта 3% раствора гипохлорита натрия,17 % раствора ЭДТА и пассивной ультразвуковой активации (общий объём растворов составлял 20 мл на каждый канал) (рис. 1). 2- я группа (5 зубов) - в качестве ирриганта использовался только физиологический раствор, а затем подвергали канал обработке лазером при следующих характеристиках: мощность - 1 Вт; частота 20 Гц, вода/воздух - 20/20; импульсов 20, tips 200mk. Лазерную насадку помещали в канал на глубину 1 мм от рабочей длины и медленными спиралевидными движениями продвигались в корональном направлении в течение 25 сек. Обработку лазером повторяли 4-кратно, в перерывах орошая канал физиологическим раствором (рис. 2). 3- я группа (5 зубов)_ - применялась аналогичная обработка, менялась только мощность лазера на 1,25 Вт. 4- я группа (5 зубов) - использовали аналогичный протокол обработки, мощность лазера увеличена до 1,5 Вт. Забор микрофлоры из обработанных каналов проводили стерильным бумажным пином, помещённым на всю длину в корневой канал в течение 30 сек, затем штифт погружали в транспортную среду Эймса с углем (рис. 3). Пробы сразу же передавали в лабораторию. Транспортные среды инкубировали в термостате в течение суток при температуре 37 °С, затем высевали секторным методом по Gould [9] на агар Мюллера-Хинтона (Mueller Hinton Agar, HiMedia, Индия) с добавлением 5 % дефибринированной крови для определения количественного роста и получения изолированных колоний. Результаты учитывали через 18-48 ч. Чистые культуры микроорганизмов получали из изолированных колоний. Идентификацию чистых культур проводили с применением MALDITOF-масс-спектрометрии [10] на анализаторе Vitek MS (BioMerieux, Франция) на базе ООО «Центр лабораторных технологий АБВ». Результаты и обсуждение В результате эксперимента на удалённых зубах мы получили следующие данные. В 1-й группе, где проводилась обработка корневого канала традиционным методом, количественный рост микрофлоры был максимальным и составил до обработки 5 • 106 КОЕ. Доминировали неферментирующие грамотрицательные палочки Brevundimonas diminuta (62-64 %) и Stenotrophomonas maltophila (36-38 %), описанные ранее как оппортунистические патогены, инфицирующие людей с ослабленным иммунитетом [11, 12]. После традиционного способа обработки каналов обнаружены единичные колонии, представленные грамположительными кокками Staphylococcus hominis - одними из наиболее типичных видов микрофлоры человека. Во 2-й группе до обработки количество микроорганизмов составило 1 • 106 КОЕ, преобладали грамотри-цательные палочки B. diminuta (72-75 %) и S. maltophila (25-28 %). После обработки лазером количество микроорганизмов снизилось в 10 раз и составило 1 • 105 КОЕ. Соотношение доминирующих микроорганизмов в образцах не изменилось: B. diminuta (7073 %) и S. maltophila (25,5-28,7 %), однако в минорных количествах обнаруживались грамположительные палочки Corynebacterium afermentans (1,3-1,5 %). В 3-й группе до обработки насчитывали 5 •IO5 КОЕ. Так же, как и в других образцах, были идентифицированы B. diminuta (20-22 %), однако в данной группе доминировали грамотрицательные палочки Hafnia alvei (78-80 %) - распространённые в окружающей среде микроорганизмы, в том числе обитающие в дыхательных путях человека. После обработки лазером рост микроорганизмов не выявлен. В 4-й группе до обработки насчитывали 1 • 106 КОЕ, соотношение видов было аналогично 3-й группе. После обработки лазером рост всех микроорганизмов отсутствовал. Таким образом, в результате исследования мы пришли к выводу, что традиционный протокол и основной ирригант гипохлорит натрия не обладают способностью к полной элиминации биоплёнки в корневых каналах. Применение лазера Er,Cr: YSGG длиной волны 2780 нм показало свою эффективность для дезинфекции корневой системы, однако следует отметить, что эффект напрямую зависит от мощности излучения - чем она выше, тем более выражен антимикробный эффект. Так, в протоколе, где мощность установлена 1 Вт, уничтожение микрофлоры произошло примерно на 50-60 %. Устойчивый антимикробный эффект на 100 % достигнут на мощности 1,5 Вт. Полученные нами данные свидетельствуют о выраженном антибактериальном эффекте лазера Er,Cr:YSGG при эндодонтическом лечении, что даёт основание рекомендовать его применение в качестве альтернативы к имеющимся стандартным способам медикаментозной обработки корневых каналов.

About the authors

Taras Vladimirovich Furtsev

Federal Research Center “Krasnoyarsk Science Center” of the Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences Scientific Research Institute of Medical Problems of the North

Email: taras.furtsev@gmail.com
Dr. Med. Sci., doctor- stomatologist-orthopedist 660022, Krasnoyarsk, Russia

A. A Kazanovskaya

Dental Clinic MediDent

660135, Russia

S. V Prudnikova

Siberian Federal University

Krasnoyarsk, 660041, Russia

References

Supplementary files